Informatie

Bevruchting van het menselijke ei - waar komt ons centrosoom vandaan?


Is er een centrosoom in een menselijke eicel? Is de reden waarom de eicel gepauzeerd blijft vóór meiose 2 omdat er geen centrosoom is, en het deelt zich alleen wanneer het sperma het bevrucht, zodat het een centrosoom kan hebben? Als dit zo is, hoe is oögenese dan gebeurd? ?


Om het eerste deel van je vraag te beantwoorden. Het sperma introduceert eigenlijk twee centrosomen. Het centrosoom vormt vervolgens de kern van de nieuwe microtubuli-assemblage om de sperma-aster te vormen - een stap die essentieel is voor een succesvolle bevruchting. U kunt deze sites bezoeken Simerly, et al en Paweltz, et al


De wetenschap bevestigt dat het menselijk leven begint bij de bevruchting

10 maart 2017 (LiveActionNews) -- De wetenschappelijke gemeenschap blijft bewijzen dat het menselijk leven begint bij de conceptie (bevruchting).

In hun nieuwste editie van De zich ontwikkelende mens: klinisch georiënteerde embryologie, werpen professoren Keith Moore, TVN Persaud en Mark Torchia veel licht op de ontwikkeling van de menselijke persoon &ndash en ze schuwen de realiteit niet wanneer het leven begint. Hier zijn zes onthullende citaten over de ontwikkeling van de foetus:

&ldquoDe ontwikkeling van de mens is een continu proces dat begint wanneer een eicel van een vrouw wordt bevrucht door een sperma van een man.&rdquo

&ldquoDe menselijke ontwikkeling begint bij de bevruchting wanneer een spermacel versmelt met een eicel om een ​​enkele cel te vormen, de zygote.&rdquo

&ldquoAlle belangrijke externe en interne structuren komen tot stand tijdens de vierde tot achtste week.&rdquo

&ldquoDe knoppen van de bovenste ledematen zijn op dag 26 of 27 herkenbaar als kleine zwellingen op de ventrolaterale lichaamswanden.&rdquo

&ldquoEmbryo's in de zesde week vertonen spontane bewegingen, zoals spiertrekkingen van de romp en zich ontwikkelende ledematen.&rdquo

&ldquoAan het einde van deze week (8e week) heeft het embryo duidelijke menselijke kenmerken, maar het hoofd is nog steeds onevenredig groot en vormt bijna de helft van het embryo.&rdquo

Deze krachtige citaten laten zien dat elk mens vanaf de vroegste stadia een uniek, levend persoon is. James Bopp vat het begin van het leven en de stadia die daarop volgen krachtig samen in: Human Life and Health Care Ethics, Vol. 2:

&ldquoDe eerste cel van een nieuw en uniek menselijk leven begint te bestaan ​​op het moment van conceptie (bevruchting) wanneer één levend sperma van de vader samenkomt met één levend ei van de moeder. Op deze manier gaat het menselijk leven van de ene generatie op de andere over. Gegeven de juiste omgeving en genetische samenstelling, leidt de enkele cel vervolgens tot triljoenen gespecialiseerde en geïntegreerde cellen die de structuren en functies van elk individueel menselijk lichaam vormen.

&ldquoIeder mens dat vandaag leeft en, voor zover wetenschappelijk bekend is, ieder mens dat ooit heeft bestaan, begon zijn of haar unieke bestaan ​​op deze manier, namelijk als één cel. Als deze eerste cel of een volgende configuratie van cellen vergaat, sterft het individu en houdt het op te bestaan ​​in de stof als een levend wezen. Er zijn geen uitzonderingen op deze regel bekend op het gebied van de menselijke biologie."

Pregeboren kind na 12 weken

Hier zijn een paar aanvullende citaten van medische experts en leerboeken over de ontwikkeling van de foetus die bewijzen dat het menselijk leven begint op het moment van bevruchting.

&ldquoDe levenscyclus van zoogdieren begint wanneer een zaadcel een eicel binnendringt.&rdquo

Okada et al., Een rol voor het elongatorcomplex in zygotische vaderlijke genoomdemethylatie, NATURE 463:554 (28 januari 2010)

&ldquoBevruchting is het proces waarbij mannelijke en vrouwelijke haploïde gameten (sperma en ei) zich verenigen om een ​​genetisch verschillend individu te produceren.&rdquo

Signorelli et al., Kinasen, fosfatasen en proteasen tijdens spermacapaciteit, CELL TISSUE RES. 349(3):765 (20 maart 2012)

&ldquoDe eileider of eileider is het anatomische gebied waar elk nieuw leven begint bij zoogdiersoorten. Na een lange reis ontmoeten de spermatozoa de eicel op de specifieke plaats van de eileider, ampulla genaamd, en vindt de bevruchting plaats.&rdquo

Coy et al., Rollen van de eileider bij zoogdierbevruchting, REPRODUCTIE 144 (6): 649 (1 oktober 2012) (nadruk toegevoegd).

&ldquoBemesting &ndash de fusie van gameten om een ​​nieuw organisme te produceren &ndash is het hoogtepunt van een groot aantal ingewikkeld gereguleerde cellulaire processen.&rdquo

Marcello et al., Fertilization, ADV. EXP. BIOL. 757:321 (2013). National Institutes of Health, Medline Plus Merriam-Webster Medical Dictionary (2013).


Wetenschappers hebben zojuist de lichtflits vastgelegd die vonken wanneer een sperma een ei ontmoet

Voor de eerste keer ooit hebben wetenschappers beelden vastgelegd van de lichtflits die vonken op het moment dat een menselijke zaadcel contact maakt met een eicel.

Het fenomeen is eerder bij dieren waargenomen, maar niemand heeft ooit de vonk van menselijke conceptie gezien. En wat nog ongelooflijker is, is het feit dat sommige eieren helderder branden dan andere, wat een directe indicatie is van hun vermogen om zich te ontwikkelen tot een gezond embryo, ontdekte een team van de Northwestern University.

Dus waarom vliegen er letterlijk vonken op het moment van conceptie? In 2011 ontdekte het Northwestern-team dat zinkvonken explodeerden op het punt van conceptie bij muizen.

Het kostte ze een paar jaar om erachter te komen hoe ze dit evenement moesten visualiseren, maar in 2014 waren ze erin geslaagd om het evenement voor de eerste keer ooit te filmen en keken ze toe hoe miljarden zinkatomen vrijkwamen op het exacte moment dat het ei van een zoogdier wordt doorboord door een zaadcel.

Met behulp van een nieuwe fluorescerende sensor die de bewegingen van zink in levende cellen kan volgen, ving het team een ​​glimp op van de zinkopslagcapaciteiten van een ei en vond zo'n 8.000 zinkcompartimenten, elk met ongeveer 1 miljoen zinkatomen, net rijp om te exploderen . Het kleine 'vuurwerk' dat daaruit voortkwam, bleek na de bevruchting ongeveer 2 uur aan te houden.

Nu is hetzelfde team erin geslaagd om deze gebeurtenis te filmen die plaatsvond in een menselijk ei op het moment van conceptie.

"Het was opmerkelijk", zegt een van de teamleden, Teresa Woodruff. "We ontdekten de zinkvonk slechts vijf jaar geleden in de muis en het was adembenemend om te zien hoe het zink in een uitbarsting uit elk menselijk ei straalde."

Als u het nieuws over gezondheidswetenschappen op de voet volgt, weet u dat de overgrote meerderheid van de onderzoeken - zelfs de meest veelbelovende - hun potentieel niet waarmaken. Misschien vertaalden positieve resultaten bij muizen zich niet in mensen, of misschien konden laboratoriumonderzoeken niet worden gerepliceerd in levende organismen. Misschien hadden de onderzoekers gewoon geen geld meer.

Maar in dit geval kunnen we zien hoe snel het team is geëvolueerd van muis naar mens, en in slechts vijf jaar tijd iets heeft ontdekt dat veel levens kan veranderen - de lichtflitsen die nu zijn gezien bij mensen voor het eerst kan worden gebruikt om de levensvatbaarheid van een individueel ei te bepalen.

Voor paren die afhankelijk zijn van IVF-behandelingen, is dat enorm, omdat ongeveer 50 procent van de bevruchte eieren zich niet goed ontwikkelen als gevolg van een soort onvermijdelijke genetische verwisseling.

Noordwestelijke Universiteit

"Dit is een belangrijke ontdekking omdat het ons een niet-invasieve en gemakkelijk zichtbare manier kan bieden om de gezondheid van een eicel en uiteindelijk een embryo te beoordelen vóór implantatie", zegt een van de onderzoekers, Eve Feinberg.

"Er zijn momenteel geen tools beschikbaar die ons vertellen of het een ei van goede kwaliteit is", voegt ze eraan toe. "Vaak weten we niet of het ei of embryo echt levensvatbaar is totdat we zien of er een zwangerschap ontstaat. Dat is de reden dat dit zo transformerend is. Als we van tevoren het vermogen hebben om te zien wat een goed ei is en wat niet, kan het zal ons helpen te weten welk embryo we moeten terugplaatsen, veel verdriet vermijden en veel sneller zwanger worden."

Voor het experiment gebruikte het team een ​​sperma-enzym om het ei te activeren (het bevruchten van het ei met echt sperma voor onderzoeksdoeleinden is illegaal volgens de Amerikaanse federale wetgeving) en keek toe hoe de gebeurtenis de calciumspiegels in de eicel deed stijgen, wat leidde tot het vrijkomen van zink.

"Terwijl het zink eruit schiet, bindt het zich aan kleine moleculen die een fluorescentie uitstralen die kan worden opgepikt door cameramicroscopen", legt Sarah Knapton uit voor De Telegraaf.

Dus waarom is zink zo speciaal? De onderzoekers ontdekten dat eieren zink in compartimenten verdelen en verdelen om de ontwikkeling van een gezond embryo te beheersen - het mineraal speelt een cruciale rol bij het beheersen van de 'beslissing' die het ei maakt om uit te groeien tot een embryo - dus hoe meer zink er vrijkomt, hoe helderder de flits , en hoe levensvatbaarder het ei.

"Het ei moet eerst zink opslaan en vervolgens een deel van het zink vrijgeven om met succes door rijping, bevruchting en het begin van de embryogenese te gaan", zei een van de teamleden, Thomas O'Halloran, in 2014. "Maar hoeveel precies zink is betrokken bij dit opmerkelijke proces en waar bevindt het zich in de cel?"

Dit is hopelijk een vraag die de onderzoekers nu kunnen beantwoorden, en we kunnen niet wachten om te zien wat ze vervolgens ontdekken.

De resultaten zijn gepubliceerd in wetenschappelijke rapporten, en je kunt de beelden hieronder bekijken:


Stadia van natuurlijke bevruchting

Zo eenvoudig als het proces waarbij ei en zaadcel één worden, lijkt, in feite vereist het de activering van meerdere mechanismen en veranderingen in gameetcellen om het mogelijk te maken.

De volgende zijn de vier belangrijkste stadia van bevruchting bij de mens:

Penetratie van de corona radiata

De eerste fase van menselijke bevruchting is de penetratie van spermatozoa in de corona radiata van het ei, een laag gemaakt van cellen die het ei omringt.

Spermacellen kunnen door deze eerste barrière gaan dankzij de afgifte van het hyaluronidase-enzym en de beweging van hun flagellum (de staart).

Wanneer ze deze laag passeren, ontmoeten spermatozoa een tweede barrière: de zona pellucida (ZP). Het is een uitwendige laag die eicellen omringt.

Penetratie van de zona pellucida

Er is meer dan één enkele zaadcel nodig om het ZP af te breken. Desalniettemin zal uiteindelijk slechts één van hen de "winnaar" zijn, dat wil zeggen degene die het ei bevrucht.

Om deze tweede barrière te kunnen passeren, maakt de kop van het sperma contact met receptor ZP3 van het ZP. Dit activeert de acrosoom reactie, waarbij een reeks hydrolytische enzymen (inhoud van het acrosoom) vrijkomt. Deze enzymen lossen het ZP op om de doorgang van de zaadcel mogelijk te maken.

De acrosoomreactie veroorzaakt een reeks modificaties van de zaadcel die zijn natuurlijke capacitatie mogelijk maken. Door de capaciteit van het sperma kan het tegelijkertijd in het celei komen, waardoor de membranen van beide voortplantingscellen samensmelten.

Fusie van membranen

Wanneer de eicel het plasmamembraan van de eicel bereikt, activeert het drie verschillende processen in de vrouwelijke gameet:

  • vorming van de bevruchtingskegel
  • direct depolarisatie van het eimembraan
  • Vrijgave van corticale korrels van het ei

De vorming van de bevruchtingskegel maakt fusie mogelijk tussen de membranen van zowel het ei als het sperma, waardoor de kop van het sperma in het ei kan komen. Tegelijkertijd, dankzij depolarisatie en het vrijkomen van corticale korrels, binnendringen van meerdere zaadcellen wordt voorkomen.

Fusie van kernen en zygotevorming

Nu de passage van sperma heeft plaatsgevonden, activeert de eicel zichzelf om de meiose te beëindigen, het proces waarbij het aantal chromosomen wordt verminderd. Hiermee wordt het tweede poollichaampje losgelaten, en de chromosomen verspreiden zichzelf en vormen een structuur genaamd vrouwelijke pronucleus.

Pronuclei zijn de kernen van gameten, die de bijzonderheid hebben de helft van de chromosomen te hebben in vergelijking met de rest van de cellen in het lichaam, dat wil zeggen 23 chromosomen.

Aan de andere kant zet het sperma het bevruchtingsproces voort totdat zijn kop, die de kern bevat, de vrouwelijke pronucleus bereikt. Het sperma zal op een gegeven moment zijn staart verliezen en de kern zal opzwellen om de mannelijke pronucleus te creëren.

Wanneer beide pronuclei zijn naast elkaar, fusie optreedt.

De fusie van pronuclei betekent dat de membranen van beide uiteindelijk verdwijnen, zodat de chromosomen kunnen samensmelten. Hierdoor kan de cel zijn normale aantal chromosomen herstellen, dat wil zeggen 46 chromosomen.

Het bevruchtingsproces van de mens culmineert in de vorming van de zygoot: de eerste cel van het organisme, gemaakt nadat ei en sperma tot één zijn versmolten.

Daarnaast bepaalt de bevruchting het geslacht van de aanstaande baby op basis van geslachtschromosomen:

Mannelijke zygote geslachtschromosomen zijn XY, dus het ongeboren kind is een jongen. Vrouwelijke zygote geslachtschromosomen zijn XX, dus het ongeboren kind is een meisje.

Eicellen dragen altijd een X-chromosoom. Het geslacht van embryo's wordt dus bepaald door het sperma, dat een X- of Y-chromosoom kan dragen.

Dit is het hele menselijke bevruchtingsproces stap voor stap. U kunt echter een diagram zien van het volledige proces dat hieronder wordt samengevat:


Spark of Life: wetenschappers ontdekken het moment waarop zielen eieren binnenkomen op het moment van conceptie

In een wonderbaarlijke, letterlijk levensveranderende ontdekking hebben wetenschappers het moment ontdekt waarop een ziel een bevruchte eicel binnengaat.

Aan al onze lezers, scroll hier alsjeblieft niet voorbij.

Vandaag vragen we u nederig om de onafhankelijkheid van Catholic Online te verdedigen. 98% van onze lezers geeft niet dat ze gewoon de andere kant op kijken. Als u slechts $ 5,00 doneert, of wat u ook kunt, kan Catholic Online jarenlang blijven bloeien. De meeste mensen doneren omdat Katholiek Online nuttig is. Als Catholic Online u dit jaar $5,00 aan kennis heeft gegeven, neem dan even de tijd om te doneren. Laat de vrijwilligers die u betrouwbare, katholieke informatie brengen, zien dat hun werk ertoe doet. Als u een van onze zeldzame donoren bent, bent u onze dankbaarheid en wij danken u hartelijk. Help nu >

Hoogtepunten

LOS ANGELES, CA (Catholic Online) - Katholieken hebben lang geloofd dat het leven begint op het moment van conceptie, daarom worden in-vitrofertilisatie en het gebruik van voorbehoedsmiddelen als immoreel beschouwd.

Nu, met de ontdekking van de vonk van het leven, heeft de wetenschap misschien bewezen dat de kerk altijd al gelijk heeft gehad.

Onderzoekers ontdekten het moment waarop een menselijke ziel een ei binnengaat, wat pro-life groepen een nog grotere voorsprong geeft in de strijd tussen embryonaal leven en dood. Het precieze moment wordt gevierd met een zap van energie die vrijkomt rond het pas bevruchte ei.

Teresa Woodruff, een van de hoofdauteurs van het onderzoek en professor in verloskunde en gynaecologie aan de universiteit, bracht een persbericht uit waarin ze verklaarde: "Het was adembenemend om het zink uit elk menselijk ei te zien stralen."

Hoewel wetenschappers niet kunnen verklaren waarom het ei zink afgeeft, dat zich vervolgens met een flits aan kleine moleculen bindt, erkennen de gelovigen dat dit het moment moet zijn waarop God een wonder laat gebeuren.

Wetenschappers zien de ontdekking als een kans om de in-vitrofertilisatie te verbeteren, wat momenteel de bevruchting van meerdere eieren omvat, maar het gebruik van slechts één, waardoor de rest vergaat.

"Dit betekent dat als je naar de zinkvonk kunt kijken op het moment van bevruchting, je meteen weet welke eieren de goede zijn om over te zetten bij in-vitrofertilisatie", legt Woodruff uit. "Het is een manier om de kwaliteit van eieren te sorteren op een manier die we nog nooit eerder hebben kunnen beoordelen.

"De hele biologie begint op het moment van bevruchting, maar we weten bijna niets over de gebeurtenissen die plaatsvinden in de menselijke [baarmoeder]."

Hopelijk zal de ontdekking niet alleen moeders aanmoedigen om hun ongeboren kinderen te houden, maar zal het ook leiden tot nieuwe methoden die slechts één eicel bevruchten, waardoor de vernietiging van andere onschuldige levens wordt voorkomen. In de tussentijd blijven onderzoekers de implicaties van de vonk onderzoeken.


Resultaten

Patiëntkenmerken en behandelresultaat

We analyseerden in totaal 451 IVF-ICSI-cycli, waarvan 208 TESE-ICSI-cycli en 243 ICSI-cycli met geëjaculeerd sperma. De leeftijd van vrouwen en mannen verschilde niet tussen de TESE-ICSI-groep en de ICSI-groep met ejaculaat sperma, met een mediane leeftijd van 33 jaar (IQR 29-36 en IQR 30-37) voor vrouwen en 35 jaar (IQR 31-40 en IQR 31–41) voor mannen. Het type ovariële stimulatieregime dat werd gebruikt was significant verschillend tussen de twee groepen (74% onderging gelijktijdige behandeling met GnRH-agonist in de TESE-ICSI-groep versus 51% in de ICSI-groep met ejaculaat sperma). Het aantal opgezogen eicellen was significant hoger in de TESE-ICSI-groep met een mediaan van 9 (IQR 6-14) eicellen en 7 (IQR 5-10) eicellen in de ICSI-groep met geëjaculeerd sperma. Van de mannen die TESE ondergingen, kregen 141 (67,8%) de diagnose NOA en 62 (29,8%) OA, 5 (2,4%) werden gediagnosticeerd met cryptozoöspermie. Infertiliteit met mannelijke factor werd vastgesteld bij 228 patiënten van de ICSI-groep met ejaculaat sperma. De overige 15 ICSI met ejaculeerde spermacycli werden uitgevoerd vanwege een eerdere IVF-cyclus die resulteerde in TFF. De kenmerken van de behandelingsresultaten van transfers van verse embryo's worden weergegeven in Tabel 1. De bevruchtingspercentages waren lager na TESE-ICSI, maar er werden geen verschillen waargenomen in de proportie bevruchte eicellen die resulteerden in een embryo dat werd gebruikt voor transfer of cryopreservatie. De zwangerschapsuitkomsten waren ook niet verschillend tussen de twee groepen. Binnen de TESE-ICSI-groep resulteerden cycli van mannen met de diagnose NOA in een lager bevruchtingspercentage per teruggewonnen eicel dan cycli van mannen met de diagnose OA (NOA 20,6% in het hoogste kwartiel van bevruchtingspercentage versus OA 30,6%, aanvullende tabel S2). Dit komt overeen met eerdere rapporten [48-50].

Uitkomstkenmerken van cycli opgenomen in de time-lapse-analyse en zwangerschapsuitkomst na verse embryotransfer in TESE-ICSI en ICSI met geëjaculeerd sperma.

. TESE-ICSI. ICSI (met ejaculaat sperma) . p-waarde .
Aantal geanalyseerde cycli 208 243
MII eicellen 7 (5–11) 6 (4–9) <0.001
Bevruchte eicellen 4 (2–6) 4 (2–6) 0.301
Bevruchtingssnelheid (bevruchte eicellen/MII-eicellen)
0–25% 30 (14.4) 10 (4.1) <0.001
25.01–50% 55 (26.4) 39 (16.0)
50.01–75% 73 (35.1) 79 (32.5)
75.01–100% 50 (24.0) 115 (47.3)
Totaal aantal geanalyseerde embryo's 639 866 NA
overgedragen 193 (30.2) 259 (29.9)
Bevroren 446 (69.8) 607 (70.1)
Gebruikssnelheid van embryo's (aantal gecryopreserveerde en teruggeplaatste embryo's/aantal bi-pronucleaire zygoten)
0–25% 8 (3.8) 3 (1.2) 0.275
25.01–50% 50 (24.0) 60 (24.7)
50.01–75% 46 (22.1) 64 (26.3)
75.01–100% 102 (49.0) 116 (47.7)
Geen bi-pronucleaire zygoten 2 (1.0) 0 (0)
Kwaliteit van geïnjecteerde testiculaire spermatozoa NA
beweeglijke spermatozoa 589 (92.2) NA
Immotiele levensvatbare spermatozoa 50 (7.8) NA
Embryo's overgedragen
Enkele embryotransfer 175 (84.1) 195 (80.2) 0.001
Dubbele embryotransfer 8 (3.8) 32 (13.2)
Geen overboeking 25 (12.0) 16 (6.6)
Biochemische zwangerschap (%) 82 (44.8) 102 (44.9) 0.980
Foetale hartslag bij 12 weken zwangerschap (%)
1 67 (36.6) 81 (35.7) 0.966
2 1 (0.5) 2 (0.9)
Live geboorte (%)
Singleton 52 (28.4) 60 (26.4) 0.692
Tweeling 0 (0) 2 (0.9)
Nog steeds zwanger tijdens analyse 11 (6.0) 13 (5.7)
. TESE-ICSI. ICSI (met ejaculaat sperma) . p-waarde .
Aantal geanalyseerde cycli 208 243
MII eicellen 7 (5–11) 6 (4–9) <0.001
Bevruchte eicellen 4 (2–6) 4 (2–6) 0.301
Bevruchtingssnelheid (bevruchte eicellen/MII-eicellen)
0–25% 30 (14.4) 10 (4.1) <0.001
25.01–50% 55 (26.4) 39 (16.0)
50.01–75% 73 (35.1) 79 (32.5)
75.01–100% 50 (24.0) 115 (47.3)
Totaal aantal geanalyseerde embryo's 639 866 NA
overgedragen 193 (30.2) 259 (29.9)
Bevroren 446 (69.8) 607 (70.1)
Gebruikssnelheid van embryo's (aantal gecryopreserveerde en teruggeplaatste embryo's/aantal bi-pronucleaire zygoten)
0–25% 8 (3.8) 3 (1.2) 0.275
25.01–50% 50 (24.0) 60 (24.7)
50.01–75% 46 (22.1) 64 (26.3)
75.01–100% 102 (49.0) 116 (47.7)
Geen bi-pronucleaire zygoten 2 (1.0) 0 (0)
Kwaliteit van geïnjecteerde testiculaire spermatozoa NA
Beweeglijke spermatozoa 589 (92.2) NA
Immotiele levensvatbare spermatozoa 50 (7.8) NA
Embryo's overgedragen
Enkele embryotransfer 175 (84.1) 195 (80.2) 0.001
Dubbele embryotransfer 8 (3.8) 32 (13.2)
Geen overboeking 25 (12.0) 16 (6.6)
Biochemische zwangerschap (%) 82 (44.8) 102 (44.9) 0.980
Foetale hartslag bij 12 weken zwangerschap (%)
1 67 (36.6) 81 (35.7) 0.966
2 1 (0.5) 2 (0.9)
Live geboorte (%)
Singleton 52 (28.4) 60 (26.4) 0.692
Tweeling 0 (0) 2 (0.9)
Nog steeds zwanger tijdens analyse 11 (6.0) 13 (5.7)

Elke cyclus is afgeleid van een uniek patiëntenpaar. Gegevens worden weergegeven als aantal (%) of mediaan (interkwartielbereik). Een p-waarde van < 0,05 werd als significant beschouwd. TESE-ICSI, testiculaire sperma-extractie met intracytoplasmatische sperma-injectie ICSI, intracytoplasmatische sperma-injectie NVT, niet van toepassing MII-oöcyten, metafase II-oöcyten.

Uitkomstkenmerken van cycli opgenomen in de time-lapse-analyse en zwangerschapsuitkomst na verse embryotransfer in TESE-ICSI en ICSI met ejaculaat sperma.

. TESE-ICSI. ICSI (met ejaculaat sperma) . p-waarde .
Aantal geanalyseerde cycli 208 243
MII eicellen 7 (5–11) 6 (4–9) <0.001
Bevruchte eicellen 4 (2–6) 4 (2–6) 0.301
Bevruchtingssnelheid (bevruchte eicellen/MII-eicellen)
0–25% 30 (14.4) 10 (4.1) <0.001
25.01–50% 55 (26.4) 39 (16.0)
50.01–75% 73 (35.1) 79 (32.5)
75.01–100% 50 (24.0) 115 (47.3)
Totaal aantal geanalyseerde embryo's 639 866 NA
overgedragen 193 (30.2) 259 (29.9)
Bevroren 446 (69.8) 607 (70.1)
Gebruikspercentage embryo's (aantal gecryopreserveerde en teruggeplaatste embryo's/aantal bi-pronucleaire zygoten)
0–25% 8 (3.8) 3 (1.2) 0.275
25.01–50% 50 (24.0) 60 (24.7)
50.01–75% 46 (22.1) 64 (26.3)
75.01–100% 102 (49.0) 116 (47.7)
Geen bi-pronucleaire zygoten 2 (1.0) 0 (0)
Kwaliteit van geïnjecteerde testiculaire spermatozoa NA
Beweeglijke spermatozoa 589 (92.2) NA
Immotiele levensvatbare spermatozoa 50 (7.8) NA
Embryo's overgedragen
Enkele embryotransfer 175 (84.1) 195 (80.2) 0.001
Dubbele embryotransfer 8 (3.8) 32 (13.2)
Geen overboeking 25 (12.0) 16 (6.6)
Biochemische zwangerschap (%) 82 (44.8) 102 (44.9) 0.980
Foetale hartslag bij 12 weken zwangerschap (%)
1 67 (36.6) 81 (35.7) 0.966
2 1 (0.5) 2 (0.9)
Live geboorte (%)
Singleton 52 (28.4) 60 (26.4) 0.692
Tweeling 0 (0) 2 (0.9)
Nog steeds zwanger tijdens analyse 11 (6.0) 13 (5.7)
. TESE-ICSI. ICSI (met ejaculaat sperma) . p-waarde .
Aantal geanalyseerde cycli 208 243
MII eicellen 7 (5–11) 6 (4–9) <0.001
Bevruchte eicellen 4 (2–6) 4 (2–6) 0.301
Bevruchtingssnelheid (bevruchte eicellen/MII-eicellen)
0–25% 30 (14.4) 10 (4.1) <0.001
25.01–50% 55 (26.4) 39 (16.0)
50.01–75% 73 (35.1) 79 (32.5)
75.01–100% 50 (24.0) 115 (47.3)
Totaal aantal geanalyseerde embryo's 639 866 NA
overgedragen 193 (30.2) 259 (29.9)
Bevroren 446 (69.8) 607 (70.1)
Gebruikssnelheid van embryo's (aantal gecryopreserveerde en teruggeplaatste embryo's/aantal bi-pronucleaire zygoten)
0–25% 8 (3.8) 3 (1.2) 0.275
25.01–50% 50 (24.0) 60 (24.7)
50.01–75% 46 (22.1) 64 (26.3)
75.01–100% 102 (49.0) 116 (47.7)
Geen bi-pronucleaire zygoten 2 (1.0) 0 (0)
Kwaliteit van geïnjecteerde testiculaire spermatozoa NA
Beweeglijke spermatozoa 589 (92.2) NA
Immotiele levensvatbare spermatozoa 50 (7.8) NA
Embryo's overgedragen
Enkele embryotransfer 175 (84.1) 195 (80.2) 0.001
Dubbele embryotransfer 8 (3.8) 32 (13.2)
Geen overboeking 25 (12.0) 16 (6.6)
Biochemische zwangerschap (%) 82 (44.8) 102 (44.9) 0.980
Foetale hartslag bij 12 weken zwangerschap (%)
1 67 (36.6) 81 (35.7) 0.966
2 1 (0.5) 2 (0.9)
Live geboorte (%)
Singleton 52 (28.4) 60 (26.4) 0.692
Tweeling 0 (0) 2 (0.9)
Nog steeds zwanger tijdens analyse 11 (6.0) 13 (5.7)

Elke cyclus is afgeleid van een uniek patiëntenpaar. Gegevens worden weergegeven als aantal (%) of mediaan (interkwartielbereik). Een p-waarde van < 0,05 werd als significant beschouwd. TESE-ICSI, testiculaire sperma-extractie met intracytoplasmatische sperma-injectie ICSI, intracytoplasmatische sperma-injectie NVT, niet van toepassing MII-oöcyten, metafase II-oöcyten.

Ontwikkelingskinetiek van embryo's

Representatieve time-lapse-video's van embryo's die het resultaat waren na ICSI met testiculair of geëjaculeerd sperma werden geüpload (aanvullende video's S1 en S2). Embryo's die werden gebruikt voor verse overdracht of cryopreservatie werden geannoteerd voor tPNa, tPNf en t2 tot t8 (aanvullende tabel S1). De mediane tijden in uren die nodig zijn om een ​​bepaald ontwikkelingstijdstip te bereiken worden weergegeven (Tabel 2). Om verschillen in morfokinetiek te onderzoeken, hebben we een lineaire gemengde modelanalyse uitgevoerd met ICSI-embryo's afkomstig van geëjaculeerd sperma als referentie, terwijl we rekening houden met clustering van embryo's van elk paar (Tabel 2, model 1). In een tweede model hebben we ook gecorrigeerd voor het ovariële stimulatieregime met gelijktijdige behandeling met GnRH-agonist of -antagonist (Tabel 2, model 2). Lineaire gemengde modelanalyse toonde een negatieve bèta van 0,55 uur voor de start van tPNa. Dit betekent dat tPNa 0,55 uur eerder begon in TESE-ICSI-embryo's in vergelijking met ICSI-embryo's afkomstig van geëjaculeerd sperma (95% betrouwbaarheidsinterval (BI): −0,85 tot −0,25). Ook werd in TESE-ICSI-embryo's het interval van tPNa tot tPNf verlengd met 0,55 uur (95% BI: 0,05 tot 1,04) (Tabel 2, model 2).

Resultaten van de lineaire gemengde modelanalyse die morfokinetische parameters vergelijkt van alle overgedragen en gecryopreserveerde embryo's die het resultaat zijn van intracytoplasmatische sperma-injectie met testiculair sperma (TESE-ICSI), met behulp van embryo's die zijn verkregen na ICSI met geëjaculeerd sperma als referentie

Morfokinetische parameters. Mediaan (IQR) uur . Model 1
Bèta [95% BI] uur .
. Model 2
Bèta [95% BI] uur .
.
. TESE-ICSI. ICSI (geëjaculeerd sperma) . TESE-ICSI. ICSI (geëjaculeerd sperma) . p-waarde . TESE-ICSI. ICSI (geëjaculeerd sperma) . p-waarde .
tPNa 7.2 (6.1–8.7) 7.7 (6.7–9.1) −0,49 [−0,78 tot −0,20] Verwijzing 0.001 −0,55 [−0,85 tot −0,25] Verwijzing <0.001
tPNf 23.2 (21.4–25.3) 23.5 (21.6–25.3) −0,06 [−0,56 tot 0,43] Verwijzing 0.799 −0,01 [−0,52 tot 0,51] Verwijzing 0.978
tPNf – tPNa 15.7 (12.3–17.7) 15.5 (13.6–17.4) 0,43 [−0,05 tot 0,92] Verwijzing 0.079 0,55 [0,05 tot 1,04] Verwijzing 0.032
t2 25.8 (22.3–28.1) 26.0 (24.2–27.9) 0,12 [−0,43 tot 0,67] Verwijzing 0.663 0,16 [−0,41 tot 0,72] Verwijzing 0.584
t3 36.1 (32.6–39.2) 36.8 (33.4–39.5) −0,48 [−1,20 tot 0,25] Verwijzing 0.196 −0,24 [−0,99 tot 0,51] Verwijzing 0.528
t4 37.4 (34.5–40.5) 38.2 (35.2–41.0) −0,44 [−1,17 tot 0,30] Verwijzing 0.240 −0,22 [−0,97 tot 0,54] Verwijzing 0.577
t5 48.8 (43.4–53.4) 49.8 (44.7–54.1) −1.11 [−2.16 tot −0.05] Verwijzing 0.040 −0,88 [−1,97 tot 0,20] Verwijzing 0.111
t6 51.4 (47.2–55.1) 51.7 (48.0–55.8) −1,04 [−2,06 tot −0,03] Verwijzing 0.044 −0,81 [−1,86 tot 0,25] Verwijzing 0.133
t7 53.1 (49.3–58.3) 53.5 (49.8–57.9) −0,46 [−1,55 tot 0,62] Verwijzing 0.402 −0,37 [−1,50 tot 0,76] Verwijzing 0.520
t8 55.2 (51.2–61.5) 55.9 (51.6–61.5) −0,29 [−1,49 tot 0,92] Verwijzing 0.640 −0,30 [−1,55 tot 0,96] Verwijzing 0.643
Morfokinetische parameters. Mediaan (IQR) uur . Model 1
Bèta [95% BI] uur .
. Model 2
Bèta [95% BI] uur .
.
. TESE-ICSI. ICSI (geëjaculeerd sperma) . TESE-ICSI. ICSI (geëjaculeerd sperma) . p-waarde . TESE-ICSI. ICSI (geëjaculeerd sperma) . p-waarde .
tPNa 7.2 (6.1–8.7) 7.7 (6.7–9.1) −0,49 [−0,78 tot −0,20] Verwijzing 0.001 −0,55 [−0,85 tot −0,25] Verwijzing <0.001
tPNf 23.2 (21.4–25.3) 23.5 (21.6–25.3) −0,06 [−0,56 tot 0,43] Verwijzing 0.799 −0,01 [−0,52 tot 0,51] Verwijzing 0.978
tPNf – tPNa 15.7 (12.3–17.7) 15.5 (13.6–17.4) 0,43 [−0,05 tot 0,92] Verwijzing 0.079 0,55 [0,05 tot 1,04] Verwijzing 0.032
t2 25.8 (22.3–28.1) 26.0 (24.2–27.9) 0,12 [−0,43 tot 0,67] Verwijzing 0.663 0,16 [−0,41 tot 0,72] Verwijzing 0.584
t3 36.1 (32.6–39.2) 36.8 (33.4–39.5) −0,48 [−1,20 tot 0,25] Verwijzing 0.196 −0,24 [−0,99 tot 0,51] Verwijzing 0.528
t4 37.4 (34.5–40.5) 38.2 (35.2–41.0) −0,44 [−1,17 tot 0,30] Verwijzing 0.240 −0,22 [−0,97 tot 0,54] Verwijzing 0.577
t5 48.8 (43.4–53.4) 49.8 (44.7–54.1) −1.11 [−2.16 tot −0.05] Verwijzing 0.040 −0,88 [−1,97 tot 0,20] Verwijzing 0.111
t6 51.4 (47.2–55.1) 51.7 (48.0–55.8) −1,04 [−2,06 tot −0,03] Verwijzing 0.044 −0,81 [−1,86 tot 0,25] Verwijzing 0.133
t7 53.1 (49.3–58.3) 53.5 (49.8–57.9) −0,46 [−1,55 tot 0,62] Verwijzing 0.402 −0,37 [−1,50 tot 0,76] Verwijzing 0.520
t8 55.2 (51.2–61.5) 55.9 (51.6–61.5) −0,29 [−1,49 tot 0,92] Verwijzing 0.640 −0,30 [−1,55 tot 0,96] Verwijzing 0.643

Medianen worden gerapporteerd in uren (interkwartielbereik). Bèta's worden gerapporteerd als schattingen in uren voor TESE-ICSI-embryo's om een ​​bepaald tijdstip of interval te bereiken met ICSI-embryo's afkomstig van geëjaculeerd sperma als referentie. Model 1: rekening houden met clustering van embryo's van elk paar model 2: rekening houden met clustering van embryo's van elk paar en aanpassen voor de ovariële stimulatie-aanpak. Een p-waarde van < 0,05 werd als significant beschouwd. IQR, interkwartielafstand tPNa, tijd tussen de injectie van spermatozoa in de eicel en het verschijnen van de twee pronuclei (PN) tPNf, vervaging van de PN tPNf-tPNa, tijd tussen tPNa en tPNf t2, tijd van splitsing van het embryo tot de 2 - celstadium t3, tijdstip van splitsing van het embryo tot het 3-celstadium t4, tijdstip van splitsing van het embryo tot het 4-celstadium t5, tijdstip van splitsing van het embryo tot het 5-cellige stadium t6, tijdstip van splitsing van het embryo tot het 6-cellige stadium t7, tijdstip van splitsing van het embryo tot het 7-cellige stadium t8, tijdstip van splitsing van het embryo tot het 8-cellige stadium.

Resultaten van de lineaire gemengde modelanalyse die morfokinetische parameters vergelijkt van alle overgedragen en gecryopreserveerde embryo's die het resultaat zijn van intracytoplasmatische sperma-injectie met testiculair sperma (TESE-ICSI), met behulp van embryo's die zijn verkregen na ICSI met geëjaculeerd sperma als referentie

Morfokinetische parameters. Mediaan (IQR) uur . Model 1
Bèta [95% BI] uur .
. Model 2
Bèta [95% BI] uur .
.
. TESE-ICSI. ICSI (geëjaculeerd sperma) . TESE-ICSI. ICSI (geëjaculeerd sperma) . p-waarde . TESE-ICSI. ICSI (geëjaculeerd sperma) . p-waarde .
tPNa 7.2 (6.1–8.7) 7.7 (6.7–9.1) −0,49 [−0,78 tot −0,20] Verwijzing 0.001 −0,55 [−0,85 tot −0,25] Verwijzing <0.001
tPNf 23.2 (21.4–25.3) 23.5 (21.6–25.3) −0,06 [−0,56 tot 0,43] Verwijzing 0.799 −0,01 [−0,52 tot 0,51] Verwijzing 0.978
tPNf – tPNa 15.7 (12.3–17.7) 15.5 (13.6–17.4) 0,43 [−0,05 tot 0,92] Verwijzing 0.079 0,55 [0,05 tot 1,04] Verwijzing 0.032
t2 25.8 (22.3–28.1) 26.0 (24.2–27.9) 0,12 [−0,43 tot 0,67] Verwijzing 0.663 0,16 [−0,41 tot 0,72] Verwijzing 0.584
t3 36.1 (32.6–39.2) 36.8 (33.4–39.5) −0,48 [−1,20 tot 0,25] Verwijzing 0.196 −0,24 [−0,99 tot 0,51] Verwijzing 0.528
t4 37.4 (34.5–40.5) 38.2 (35.2–41.0) −0,44 [−1,17 tot 0,30] Verwijzing 0.240 −0,22 [−0,97 tot 0,54] Verwijzing 0.577
t5 48.8 (43.4–53.4) 49.8 (44.7–54.1) −1.11 [−2.16 tot −0.05] Verwijzing 0.040 −0,88 [−1,97 tot 0,20] Verwijzing 0.111
t6 51.4 (47.2–55.1) 51.7 (48.0–55.8) −1,04 [−2,06 tot −0,03] Verwijzing 0.044 −0,81 [−1,86 tot 0,25] Verwijzing 0.133
t7 53.1 (49.3–58.3) 53.5 (49.8–57.9) −0,46 [−1,55 tot 0,62] Verwijzing 0.402 −0,37 [−1,50 tot 0,76] Verwijzing 0.520
t8 55.2 (51.2–61.5) 55.9 (51.6–61.5) −0,29 [−1,49 tot 0,92] Verwijzing 0.640 −0,30 [−1,55 tot 0,96] Verwijzing 0.643
Morfokinetische parameters. Mediaan (IQR) uur . Model 1
Bèta [95% BI] uur .
. Model 2
Bèta [95% BI] uur .
.
. TESE-ICSI. ICSI (geëjaculeerd sperma) . TESE-ICSI. ICSI (geëjaculeerd sperma) . p-waarde . TESE-ICSI. ICSI (geëjaculeerd sperma) . p-waarde .
tPNa 7.2 (6.1–8.7) 7.7 (6.7–9.1) −0,49 [−0,78 tot −0,20] Verwijzing 0.001 −0,55 [−0,85 tot −0,25] Verwijzing <0.001
tPNf 23.2 (21.4–25.3) 23.5 (21.6–25.3) −0,06 [−0,56 tot 0,43] Verwijzing 0.799 −0,01 [−0,52 tot 0,51] Verwijzing 0.978
tPNf – tPNa 15.7 (12.3–17.7) 15.5 (13.6–17.4) 0,43 [−0,05 tot 0,92] Verwijzing 0.079 0,55 [0,05 tot 1,04] Verwijzing 0.032
t2 25.8 (22.3–28.1) 26.0 (24.2–27.9) 0,12 [−0,43 tot 0,67] Verwijzing 0.663 0,16 [−0,41 tot 0,72] Verwijzing 0.584
t3 36.1 (32.6–39.2) 36.8 (33.4–39.5) −0,48 [−1,20 tot 0,25] Verwijzing 0.196 −0,24 [−0,99 tot 0,51] Verwijzing 0.528
t4 37.4 (34.5–40.5) 38.2 (35.2–41.0) −0,44 [−1,17 tot 0,30] Verwijzing 0.240 −0,22 [−0,97 tot 0,54] Verwijzing 0.577
t5 48.8 (43.4–53.4) 49.8 (44.7–54.1) −1.11 [−2.16 tot −0.05] Verwijzing 0.040 −0,88 [−1,97 tot 0,20] Verwijzing 0.111
t6 51.4 (47.2–55.1) 51.7 (48.0–55.8) −1,04 [−2,06 tot −0,03] Verwijzing 0.044 −0,81 [−1,86 tot 0,25] Verwijzing 0.133
t7 53.1 (49.3–58.3) 53.5 (49.8–57.9) −0,46 [−1,55 tot 0,62] Verwijzing 0.402 −0,37 [−1,50 tot 0,76] Verwijzing 0.520
t8 55.2 (51.2–61.5) 55.9 (51.6–61.5) −0,29 [−1,49 tot 0,92] Verwijzing 0.640 −0,30 [−1,55 tot 0,96] Verwijzing 0.643

Medianen worden gerapporteerd in uren (interkwartielbereik). Bèta's worden gerapporteerd als schattingen in uren voor TESE-ICSI-embryo's om een ​​bepaald tijdstip of interval te bereiken met ICSI-embryo's afkomstig van geëjaculeerd sperma als referentie. Model 1: rekening houden met clustering van embryo's van elk paar model 2: rekening houden met clustering van embryo's van elk paar en aanpassen voor de ovariële stimulatie-aanpak. Een p-waarde van < 0,05 werd als significant beschouwd. IQR, interkwartielafstand tPNa, tijd tussen de injectie van spermatozoa in de eicel en het verschijnen van de twee pronuclei (PN) tPNf, vervaging van de PN tPNf-tPNa, tijd tussen tPNa en tPNf t2, tijd van splitsing van het embryo tot de 2 - celstadium t3, tijdstip van splitsing van het embryo tot het 3-celstadium t4, tijdstip van splitsing van het embryo tot het 4-celstadium t5, tijdstip van splitsing van het embryo tot het 5-cellige stadium t6, tijdstip van splitsing van het embryo tot het 6-cellige stadium t7, tijdstip van splitsing van het embryo tot het 7-cellige stadium t8, tijdstip van splitsing van het embryo tot het 8-cellige stadium.

Na deze aanvankelijke vertraging bereikten TESE-ICSI-embryo's het 5- en 6-celstadium 1,11 en 1,04 uur eerder (95% BI: -2,16 tot -0,05 en 95% BI: -2,06 tot -0,03) dan ICSI-embryo's afkomstig van geëjaculeerde sperma, maar dit effect verdween na correctie voor het ovariële stimulatieregime (Tabel 2, modellen 1 en 2). We zagen aanvankelijk een significant verschil in de tijd die nodig was voor het t3-t2-interval tussen TESE-ICSI- en ICSI-embryo's afkomstig van geëjaculeerd sperma. Uit diepgaande analyse bleek echter dat significant meer TESE-ICSI-embryo's DUC vertoonden dan ICSI-embryo's afkomstig van geëjaculeerd sperma (20,5% vs. 13,6% respectievelijk p-waarde < 0,001), in 5 h of minder (Tabel 3 en aanvullende video S3). Na uitsluiting van alle DUC-embryo's uit beide groepen, zagen we geen verschil in timing van het interval t3-t2 in onze lineaire gemengde modelanalyse (gegevens niet getoond). Er werd geen significant verschil in het optreden van DUC gevonden in de TESE-ICSI-groep tussen de diagnose NOA en OA (gegevens niet getoond). In ons cohort was embryoselectie voor overdracht niet gebaseerd op time-lapse-informatie, dus werden 45 DUC-embryo's onbewust geselecteerd voor SET op basis van hun morfologie op de dag van overdracht. De terugplaatsing van DUC-embryo's resulteerde in een lager levend geboortecijfer dan normale splijtembryo's (8,9% voor DUC-embryo's vs 30,5% voor normale splijtembryo's p-waarde 0,001 Tabel 3), ongeacht de sperma-oorsprong.

Incidentie van embryo's die directe ongelijke splitsing (DUC) of normale splitsingspatronen vertonen na TESE-ICSI en ICSI met geëjaculeerd sperma. Zwangerschapsuitkomsten na terugplaatsing van een enkel vers embryo van alle DUC-embryo's en normale gespleten embryo's in het onderzoek worden gepresenteerd

. DUC-embryo's. Normale klievende embryo's. p-waarde .
Bemestingsmethode:
TESE-ICSI 131 (20.5) 508 (79.5) <0.001
ICSI (met ejaculaat sperma) 118 (13.6) 748 (86.4)
Foetale hartslag bij 12 weken zwangerschap
1 7 (15.6) 129 (39.7) 0.002
2 0 (0) 1 (0.3)
0 38 (84.4) 195 (60.0)
Levend geboortecijfer
Singleton 4 (8.9) 99 (30.5) 0.001
Nog steeds zwanger tijdens analyse 0 (0) 23 (7.1)
. DUC-embryo's. Normale klievende embryo's. p-waarde .
Bemestingsmethode:
TESE-ICSI 131 (20.5) 508 (79.5) <0.001
ICSI (met ejaculaat sperma) 118 (13.6) 748 (86.4)
Foetale hartslag bij 12 weken zwangerschap
1 7 (15.6) 129 (39.7) 0.002
2 0 (0) 1 (0.3)
0 38 (84.4) 195 (60.0)
Levend geboortecijfer
Singleton 4 (8.9) 99 (30.5) 0.001
Nog steeds zwanger tijdens analyse 0 (0) 23 (7.1)

Gegevens worden weergegeven als aantal (%). Een p-waarde van < 0,05 werd als significant beschouwd. DUC, directe ongelijke splitsing (embryo's die 5 uur of minder nodig hadden tijdens het interval tussen het 2- en het 3-cellige stadium) TESE-ICSI, testiculaire sperma-extractie met intracytoplasmatische sperma-injectie ICSI, intracytoplasmatische sperma-injectie.

Incidentie van embryo's die directe ongelijke splitsing (DUC) of normale splitsingspatronen vertonen na TESE-ICSI en ICSI met geëjaculeerd sperma. Zwangerschapsuitkomsten na terugplaatsing van een enkel vers embryo van alle DUC-embryo's en normale gespleten embryo's in de studie worden gepresenteerd

. DUC-embryo's. Normale klievende embryo's. p-waarde .
Bemestingsmethode:
TESE-ICSI 131 (20.5) 508 (79.5) <0.001
ICSI (met ejaculaat sperma) 118 (13.6) 748 (86.4)
Foetale hartslag bij 12 weken zwangerschap
1 7 (15.6) 129 (39.7) 0.002
2 0 (0) 1 (0.3)
0 38 (84.4) 195 (60.0)
Levend geboortecijfer
Singleton 4 (8.9) 99 (30.5) 0.001
Nog steeds zwanger tijdens analyse 0 (0) 23 (7.1)
. DUC-embryo's. Normale klievende embryo's. p-waarde .
Bemestingsmethode:
TESE-ICSI 131 (20.5) 508 (79.5) <0.001
ICSI (met ejaculaat sperma) 118 (13.6) 748 (86.4)
Foetale hartslag bij 12 weken zwangerschap
1 7 (15.6) 129 (39.7) 0.002
2 0 (0) 1 (0.3)
0 38 (84.4) 195 (60.0)
Levend geboortecijfer
Singleton 4 (8.9) 99 (30.5) 0.001
Nog steeds zwanger tijdens analyse 0 (0) 23 (7.1)

Gegevens worden weergegeven als aantal (%). Een p-waarde van < 0,05 werd als significant beschouwd. DUC, direct unequal cleavage (embryos that needed 5 h or less during the interval between the 2- and the 3-cell stage) TESE-ICSI, testicular sperm extraction with intracytoplasmic sperm injection ICSI, intracytoplasmic sperm injection.

When we compared TESE-ICSI embryos originating from men with a diagnosis of NOA (434 embryos) or OA (190 embryos), we observed no differences in morphokinetics, except for an even faster pronuclear appearance for embryos originating from men with diagnosis NOA (beta −0.51 h 95% CI: −1.00 to −0.02) ( Supplementary Table S3 , model 2). The comparison of TESE-ICSI embryos derived from motile or immotile viable spermatozoa showed no significant differences in time-lapse morphokinetics (data not shown). When we stratified within the group of ICSI with ejaculated sperm for cycles with or without severe oligoasthenozoospermia, we found no significant differences in time-lapse morphokinetics ( Supplementary Table S4 ).


Inhoud

While the non-mammalian animal egg was obvious, the doctrine ex ovo omne vivum ("every living [animal comes from] an egg"), associated with William Harvey (1578–1657), was a rejection of spontaneous generation and preformationism as well as a bold assumption that mammals also reproduced via eggs. Karl Ernst von Baer discovered the mammalian ovum in 1827. [2] [3] The fusion of spermatozoa with ova (of a starfish) was observed by Oskar Hertwig in 1876. [4] [5]

In animals, egg cells are also known as ova (singular eicel, from the Latin word eicel meaning 'egg'). De voorwaarde eicel in animals is used for the young ovum of an animal. In vertebrates, ova are produced by female gonads (sex glands) called ovaries. A number of ova are present at birth in mammals and mature via oogenesis. White et al. disproved the longstanding dogma that all of the ova are produced before birth. The team from the Vincent Center for Reproductive Biology, Massachusetts, Boston showed that oocyte formation takes place in ovaries of reproductive-age women. [6] [7] [ verduidelijking nodig ] This report challenged a fundamental belief, held since the 1950s, that female mammals are born with a finite supply of eggs that is depleted throughout life and exhausted at menopause. [8]

Mammals including humans Edit

In all mammals the ovum is fertilized inside the female body.

The human ova grow from primitive germ cells that are embedded in the substance of the ovaries. Each of them divides repeatedly to give secretions of the uterine glands, ultimately forming a blastocyst. [9]

The ovum is one of the largest cells in the human body, typically visible to the naked eye without the aid of a microscope or other magnification device. [10] The human ovum measures approximately 120 μm (0.0047 in) in diameter. [11]

Ooplasm Edit

Ooplasm (also: oöplasm) is the yolk of the ovum, a cell substance at its center, which contains its nucleus, named the germinal vesicle, and the nucleolus, called the germinal spot. [12]

The ooplasm consists of the cytoplasm of the ordinary animal cell with its spongioplasm and hyaloplasm, often called the formative yolk en de nutritive yolk of deutoplasm, made of rounded granules of fatty and albuminoid substances imbedded in the cytoplasm. [12]

Mammalian ova contain only a tiny amount of the nutritive yolk, for nourishing the embryo in the early stages of its development only. In contrast, bird eggs contain enough to supply the chick with nutriment throughout the whole period of incubation. [12]

Ova development in oviparous animals Edit

In the oviparous animals (all birds, most fish, amphibians and reptiles) the ova develop protective layers and pass through the oviduct to the outside of the body. They are fertilized by male sperm either inside the female body (as in birds), or outside (as in many fish). After fertilization, an embryo develops, nourished by nutrients contained in the egg. It then hatches from the egg, outside the mother's body. See egg for a discussion of eggs of oviparous animals.

The egg cell's cytoplasm and mitochondria are the sole means the egg can reproduce by mitosis and eventually form a blastocyst after fertilization.

Ovoviviparity Edit

There is an intermediate form, the ovoviviparous animals: the embryo develops within and is nourished by an egg as in the oviparous case, but then it hatches inside the mother's body shortly before birth, or just after the egg leaves the mother's body. Some fish, reptiles and many invertebrates use this technique.

Nearly all land plants have alternating diploid and haploid generations. Gametes are produced by the gametophyte, which is the haploid generation. The female gametophyte produces structures called archegonia, and the egg cells form within them via mitosis. The typical bryophyte archegonium consists of a long neck with a wider base containing the egg cell. Upon maturation, the neck opens to allow sperm cells to swim into the archegonium and fertilize the egg. The resulting zygote then gives rise to an embryo, which will grow into a new diploid individual (sporophyte). In seed plants, a structure called the eicel contains the female gametophyte. The gametophyte produces an egg cell. After fertilization, the ovule develops into a seed containing the embryo. [13]

In flowering plants, the female gametophyte (sometimes referred to as the embryo sac) has been reduced to just eight cells inside the ovule. The gametophyte cell closest to the micropyle opening of the ovule develops into the egg cell. Upon pollination, a pollen tube delivers sperm into the gametophyte and one sperm nucleus fuses with the egg nucleus. The resulting zygote develops into an embryo inside the ovule. The ovule, in turn, develops into a seed and in many cases, the plant ovary develops into a fruit to facilitate the dispersal of the seeds. Upon germination, the embryo grows into a seedling. [13]

In the moss Physcomitrella patens, the Polycomb protein FIE is expressed in the unfertilised egg cell (Figure, right) as the blue colour after GUS staining reveals. Soon after fertilisation the FIE gene is inactivated (the blue colour is no longer visible, left) in the young embryo. [14]

In algae, the egg cell is often called oosphere. [ citaat nodig ] Drosophila oocytes develop in individual egg chambers that are supported by nurse cells and surrounded by somatic follicle cells. The nurse cells are large polyploid cells that synthesize and transfer RNA, proteins, and organelles to the oocytes. This transfer is followed by the programmed cell death (apoptosis) of the nurse cells. During oogenesis, 15 nurse cells die for every oocyte that is produced. [15] In addition to this developmentally regulated cell death, egg cells may also undergo apoptosis in response to starvation and other insults. [15]


Vrouwelijke reproductieve anatomie

Een aantal reproductieve structuren bevinden zich buiten het lichaam van de vrouw. Deze omvatten de borsten en de vulva, die bestaat uit het schaambeen, de clitoris, de grote schaamlippen, de kleine schaamlippen en de vestibulaire klieren, allemaal geïllustreerd in figuur 3. De locatie en functies van de vrouwelijke voortplantingsorganen zijn samengevat in: tafel 2. Het mons pubis is een rond, vettig gebied dat over het schaambeen ligt. De clitoris is een structuur met erectiel weefsel dat een groot aantal sensorische zenuwen bevat en dient als een bron van stimulatie tijdens geslachtsgemeenschap. De grote schaamlippen zijn een paar langwerpige weefselplooien die naar achteren lopen van de mons pubis en de andere componenten van de vulva omsluiten. De grote schaamlippen komen voort uit hetzelfde weefsel dat het scrotum bij een man produceert. De kleine schaamlippen zijn dunne weefselplooien centraal in de grote schaamlippen. Deze schaamlippen beschermen de openingen naar de vagina en plasbuis. Het mons pubis en het voorste deel van de grote schaamlippen worden tijdens de adolescentie bedekt met haar, de kleine schaamlippen zijn haarloos. De grotere vestibulaire klieren bevinden zich aan de zijkanten van de vaginale opening en zorgen voor smering tijdens geslachtsgemeenschap. De vulva is de naam voor de hele set van uitwendige genitaliën in het liesgebied van vrouwen in de gewone taal. Dit wordt soms de vagina genoemd, maar dat is anatomisch niet nauwkeurig. De vagina is een volledig interne structuur.

Figuur 3. De reproductieve structuren van de menselijke vrouw worden getoond. (credit een: modification of work by Gray’s Anatomy credit B: wijziging van het werk door CDC)

Tabel 2. Vrouwelijke reproductieve anatomie
Orgaan Plaats Function
clitoris Extern Zintuiglijk orgaan
Mons pubis Extern Vettig gebied boven het schaambeen
grote schaamlippen Extern Bedekt kleine schaamlippen
kleine schaamlippen Extern Covers vestibule
Grotere vestibulaire klieren Extern Afscheiden van slijm om de vagina te smeren
Borst Extern Melk produceren en afleveren
eierstokken intern Eieren dragen en ontwikkelen
Oviducten (eileiders) intern Transport ei naar baarmoeder
Baarmoeder intern Ondersteuning ontwikkelen embryo
Vagina intern Gemeenschappelijke buis voor geslachtsgemeenschap, geboortekanaal, passerende menstruatie

De borsten bestaan ​​uit borstklieren en vet. De grootte van de borst wordt bepaald door de hoeveelheid vet die achter de klier wordt afgezet. Elke klier bestaat uit 15 tot 25 lobben met kanalen die leeglopen bij de tepel en die het zogende kind voorzien van melk die rijk is aan voedingsstoffen en antilichamen om de ontwikkeling te bevorderen en het kind te beschermen.

Interne vrouwelijke voortplantingsstructuren omvatten eierstokken, eileiders, de baarmoeder, en de vagina, getoond in figuur 3. De twee eierstokken (de vrouwelijke geslachtsklieren) worden in de buikholte op hun plaats gehouden door een systeem van banden. Eierstokken bestaan ​​uit een medulla en cortex: de medulla bevat zenuwen en bloedvaten om de cortex te voorzien van voedingsstoffen en afvalstoffen te verwijderen. De buitenste lagen van cellen van de cortex zijn de functionele delen van de eierstokken. De cortex bestaat uit folliculaire cellen die eieren omringen die zich ontwikkelen tijdens de ontwikkeling van de foetus in de baarmoeder. Tijdens de menstruatie ontwikkelt zich een reeks folliculaire cellen en bereidt de eieren voor op vrijlating. Bij de eisprong scheurt één follikel en komt één eicel vrij, zoals geïllustreerd in: Figuur 4a.

Figuur 4. Eicellen ontwikkelen zich in (een) follikels, gelegen in de eierstok. Aan het begin van de menstruatiecyclus rijpt de follikel. Bij de eisprong scheurt de follikel, waardoor de eicel vrijkomt. De follikel wordt een corpus luteum, dat uiteindelijk degenereert. De (B) follikel in deze lichte microfoto heeft een eicel in het midden. (credit a: wijziging van het werk door NIH-schaalbalkgegevens van Matt Russell)

De eileiders, of eileiders, strekken zich uit van de baarmoeder in de onderbuikholte naar de eierstokken, maar ze zijn niet in contact met de eierstokken. De laterale uiteinden van de eileiders lopen uit in een trompetachtige structuur en hebben een rand van vingerachtige uitsteeksels genaamd fimbriae, geïllustreerd in Figuur 4b. Wanneer een eicel vrijkomt bij de eisprong, helpen de fimbrae het niet-beweeglijke ei in de buis en doorgang naar de baarmoeder. De wanden van de eileiders zijn trilhaartjes en bestaan ​​voornamelijk uit glad spierweefsel. De trilharen slaan naar het midden en de gladde spier trekt samen in dezelfde richting, waardoor het ei naar de baarmoeder wordt verplaatst. Bevruchting vindt meestal plaats in de eileiders en het zich ontwikkelende embryo wordt voor ontwikkeling naar de baarmoeder verplaatst. Het duurt meestal een week voordat het ei of embryo door de eileider reist. Sterilisatie bij vrouwen wordt een afbinden van de eileiders genoemd. Het is analoog aan een vasectomie bij mannen doordat de eileiders worden doorgesneden en verzegeld.

De baarmoeder is een structuur ter grootte van de vuist van een vrouw. Dit is bekleed met een endometrium dat rijk is aan bloedvaten en slijmklieren. De baarmoeder ondersteunt het zich ontwikkelende embryo en de foetus tijdens de zwangerschap. Het dikste deel van de baarmoederwand bestaat uit gladde spieren. Contracties van de gladde spieren in de baarmoeder helpen bij het passeren van de baby door de vagina tijdens de bevalling. Een deel van het baarmoederslijmvlies valt tijdens elke menstruatie af en bouwt zich vervolgens weer op ter voorbereiding op een implantatie. Een deel van de baarmoeder, de baarmoederhals genaamd, steekt uit in de bovenkant van de vagina. Een kleine opening, de cervicale opening, laat menstruatievloeistof uit de baarmoederhals in de vagina en sperma in de baarmoeder. Tijdens de bevalling is de cervicale opening sterk vergroot.

De vagina is een gespierde buis die verschillende doelen dient. Het zorgt ervoor dat de menstruatie het lichaam kan verlaten. Het is de houder voor de penis tijdens de geslachtsgemeenschap en het vat voor de geboorte van nakomelingen. Het zijn beklede cellen die zure afscheidingen produceren die de groei van microben die mogelijk in de baarmoeder zouden kunnen reizen, beperken.


Fertilization of the human egg- where does our centrosome come from? - Biologie

Human Egg Freezing – The Time Has Arrived

In September 2012 the American Society of Reproductive Medicine declared that the freezing of human eggs is “no longer experimental”.

The significance of this declaration is that science and medicine finally figured out how to freeze or “cryopreserve” mature human eggs that are ready for fertilization.

These very delicate cells whose chromosomes are stretched out on what is called the spindle (think high school biology), defied reliable freezing until newer technologies developed. Simply said, as the eggs freeze, the ice crystals form inside the cells and tear the delicate inner structures apart, injuring the cells.

The new method called “vitrification” is basically a flash freeze technique that avoids the formation of ice crystals. And so, now that freezing eggs is reliable, it can be offered to patients, and this has spawned a proliferation of programs offering this service.

SO WHAT’S SO IMPORTANT ABOUT RELIABLY FROZEN EGGS? WHO DOES IT HELP?

There are several groups of people who will be candidates and could benefit from egg freezing.

First, are those women whose egg supplies are depleted and require eggs from a donor. Until now, a donor had to be found and then removal of the eggs had to be timed with the mother to be. This led to many logistical difficulties including travel and matching the hormonal cycles of the donor and recipients.

Now, faster than you can imagine “Egg Banks” are springing up where eggs have been previously collected and frozen. Patients can choose from a menu or catalog just like they can from the donors at a sperm bank. The frozen eggs can be shipped to your local fertility center, while some more proprietary egg banks demand that you travel to them. This eliminates so much of the headaches of working with an active donor and possibly reduces the cost of providing frozen eggs to the women who need them.

The second group to benefit, and who is actually being targeted by advertising campaigns, are women over 30 years old who do not have any immediate plans to start a family. Ten percent of women at age 30 and 25% of women at age 35 meet the criteria of “low egg reserve”. If they are not on the short term path to start a family, they can freeze eggs so as to be able to preserve or delay childbearing until they are ready.

Perhaps they are busy building a career or still in school or maybe “Mr. Right” has so far eluded them. If they have not given up hope of finding that person, they can preserve unfertilized eggs and store them until they are ready to make a baby.

The third group is young women, such as recent college graduates. In fact, it is their parents and grandparents who are being approached and marketed to provide these women in their early twenties with an ”insurance policy”. Rather than give the recent graduate a gift or cash, “give them a gift of life” by paying to have them cryopreserve their eggs in the hope that they will never need to use them.

There are other women who will benefit from this, such as women who are at high risk for ovarian or breast cancer and need their ovaries removed at a young age. Perhaps suddenly a woman may discover that she needs to undergo toxic anticancer treatments for let’s say leukemia that could injure her egg supply. And there are others.

STOP THE BIOLOGICAL CLOCK.

As a result, there has been a boom in the fertility world of programs offering to store your eggs as an insurance policy against delayed childbearing. This advance also is changing how women who need donated eggs acquire them. Today picking an egg donor is as easy as choosing a sperm donor.

Wat veranderde? The issue is the fact that mature eggs are locked into a very fragile state:

The chromosomes are strung out in this very delicate structure, waiting for the sperm to enter the cell. As the water in the cell freezes, ice crystals form, expand and injure the egg. The process of “vitrification”, a rapid freeze technique prevents ice crystals from forming and now allows for a successful freeze/thaw cycle. At Fertility Partnership we can successfully freeze and thaw close to 90% of mature eggs, and in typical FP fashion, we offer this service at a more affordable cost.

So if you are in no rush to start your family but want to preserve your fertility, think about freezing eggs. The process will take about a week of your time (if you are from out of town) and the eggs can remain frozen indefinitely. It is a safe and proven technique and when you want to use them, Fertility Partnership will be happy to ship them wherever you may be if you so choose.

At my clinic, Fertility Partnership in St. Peters, Missouri, we offer a round of egg collection, freezing and a year of storage for five thousand dollars. Two rounds will cost eight thousand dollars. These costs do not include medications, which are, unfortunately, generally not covered by insurance companies. The technology is simple, reliable, and with our society changing the life-path of so many women this technology is already being quickly accessed by many women who wish to control their fertility destiny.

For more information contact us and we will be happy to help you.

Come to Missouri and receive the highest quality of care at half the cost of the East or West Coast!


Implantatie

Once the embryo reaches the blastocyst stage, approximately five to six days after fertilization, it hatches out of its zona pellucida and begins the process of implantation in the uterus.

In nature, 50 percent of all fertilized eggs are lost before a woman's missed menses. In the in vitro fertilization (IVF) process as well, an embryo may begin to develop but not make it to the blastocyst stage &mdash the first stage at which those cells destined to become the fetus separate from those that will become the placenta. The blastocyst may implant but not grow, or the blastocyst may grow but stop developing before the two week time at which a pregnancy can be detected. The receptivity of the uterus and the health of the embryo are important for the implantation process.

UCSF Health medical specialists have reviewed this information. It is for educational purposes only and is not intended to replace the advice of your doctor or other health care provider. We encourage you to discuss any questions or concerns you may have with your provider.


Bekijk de video: Het wonder van conceptie tot geboorte (December 2021).