Informatie

Hebben sinaasappels sporen van zetmeel?


Dit is voor een scheikundig experiment, dus ik wil gewoon weten of er kleine sporen van zetmeel in sinaasappelen zitten, en niet of ik een sinaasappel moet eten vanwege het zetmeelgehalte, of iets in die mate.


Volgens Healthy Eating bevatten sinaasappels 8,98 g suiker, maar geen zetmeel:

De natuurlijke suiker die in fruit wordt gevonden, wekt niet zo'n grote respons omdat het in evenwicht wordt gehouden door het vezelgehalte van het fruit. Eén banaan heeft 14,43 gram suiker, vergeleken met slechts 8,98 gram in een sinaasappel. Het grootste verschil tussen de twee zit in de hoeveelheid zetmeel die elk bevat. De sinaasappel heeft er geen, terwijl de banaan 9,42 gram zetmeel heeft.


Bronnen zijn divers. Dit artikel bestudeert zetmeel in sinaasappels (ik heb geen toegang tot het volledige papier). Hier vermelden auteurs echter dat sinaasappels praktisch geen zetmeel bevatten (pas op, afbeeldingen staan ​​ondersteboven). Ze verwijzen naar werk van

Stahl A.L., rijpheidsstudies van citrusvruchten, 1938

en citeer dit werk en zeg "het zetmeelgehalte werd gemeten als 0,07-0,13%" in pulp van ananassinaasappels. Vergelijk dat met 22% van de hoeveelheid aardappelzetmeel (droge massa).


Hebben sinaasappels sporen van zetmeel? - Biologie

Metabolisme is de som van alle chemische reacties in een levend organisme. Deze reacties kunnen katabool of anabool zijn. Anabole reacties verbruiken energie om complexe biomoleculen te bouwen (denk aan anabole steroïden die spiermassa opbouwen). De energie voor anabole reacties komt meestal van ATP, dat wordt geproduceerd tijdens katabole reacties. Katabole reacties breken complexe biomoleculen, zoals koolhydraten en lipiden, af en geven de energie vrij die erin is opgeslagen.

Denk er over na

  1. Is cellulaire ademhaling anabool of katabool? Leg uit.
  2. Is fotosynthese anabool of katabool? Leg uit.

Enzymen zijn eiwitten die chemische reacties in levende systemen vergemakkelijken door te werken als katalysatoren in biochemische reacties. Enzymen versnellen de reactiesnelheid door de reactanten dicht bij elkaar te brengen of door zich aan een enkele reactant te binden en deze in kleinere delen te splitsen. Enzymen hebben een eigenschap die bekend staat als specificiteit, wat simpelweg betekent dat elk enzym een ​​specifieke biochemische reactie katalyseert. Enzymen zijn onmisbare moleculen van het leven. Enzymen zijn functioneel binnen een bepaald temperatuurbereik en pH-waarden voor dat enzym.


Rijpen en vitamine C

Met behulp van een zetmeel-jodiumoplossing meten de leerlingen de hoeveelheid vitamine C in rijpe, halfrijpe en onrijpe sinaasappels. Ze leren over de instabiliteit van vitamine C.

Onderzoeksvragen:

  • Zit er meer vitamine C in rijpe sinaasappels of onrijpe sinaasappels?
  • Zit er meer vitamine C in sinaasappels die op het aanrecht hebben gestaan ​​dan in sinaasappelen die in de koelkast zijn bewaard?
  • Wat is het gevolg van de aankoop van oude producten?
  • Hoe kan ik de vitamine C in voedingsmiddelen meten?

Vitamine C (ook bekend als ascorbinezuur) is zeer onstabiel en heeft een korte houdbaarheid. Terwijl onrijpe vruchten hoge concentraties vitamine C bevatten, neemt dit af naarmate het fruit rijpt. Naarmate rijp fruit ouder wordt, blijft de vitamine C verdwijnen.

De studenten kunnen deze fenomenen evalueren met behulp van een zetmeel- en jodiumoplossing. Jodium reageert op zetmeel door paars te worden, tenzij vitamine C aanwezig is. Daarom wordt de dieppaarse zetmeeljodiumoplossing helder wanneer studenten het in het sinaasappelsap druppelen. Terwijl de helderheid verdwijnt door het toevoegen van extra jodiumzetmeeloplossing, zullen hogere concentraties vitamine C meer jodium-zetmeeloplossing nodig hebben om te voorkomen dat het mengsel helder wordt.

Materialen:

  • Drievoudige straal of schaalbalans
  • Maïszetmeel
  • 2 gallons gedestilleerd water
  • Twee glazen kannen van een gallon (zoals appelcider wordt verkocht in)
  • 50 ml geconcentreerd HCl
  • 13 g jodium
  • 20 g kaliumjodide
  • Een Erlenmeyer van 250 of 500 ml
  • Maatcilinder
  • Beker van 1 liter (andere soorten glazen containers zijn voldoende)
  • 250 ml beker
  • Buret
  • Koker
  • Klem en standaard voor het vasthouden van buret
  • Rijpe, halfrijpe en onrijpe sinaasappels
  • Sapcentrifuge (optioneel)

Hoewel reagentia en glaswerk verkrijgbaar zijn bij een laboratorium, kunnen studenten deze hopelijk lenen van hun school. Gedestilleerd water is verkrijgbaar bij grote kruideniers of bij je schoollab. Maïszetmeel is verkrijgbaar bij supermarkten. Het is misschien gemakkelijker om onrijpe sinaasappels te krijgen als je in Florida of Californië woont, waar je ze van een boom kunt krijgen.

Experimentele procedure:

Maak twee oplossingen voordat u met het experiment begint: (1) de zetmeelreactieoplossing en (2) 0,01 N jodium. Deze twee oplossingen worden gemaakt zoals hieronder aangegeven.

Zetmeel oplossing

  1. Weeg 1,2 g maizenapoeder af en doe dit in een kleine steelpan.
  2. Maak brij van het maizenapoeder en 20 ml gedestilleerd water.
  3. Voeg 180 ml toe aan de suspensie.
  4. Breng aan de kook en roer (dit kan op het fornuis).
  5. Vul een glazen kan van een gallon met een halve gallon gedestilleerd water.
  6. Voeg 47 ml geconcentreerd HCl toe aan de 1 gallon kruik.
  7. Voeg 20 ml van de maizena-oplossing toe aan de 1 gallon kan.
  8. Vul de kan met nog een halve liter water.
  9. Roeren. Dek af met een deksel en etiket.

0,01 N jodiumoplossing

  1. Meet 12,7 g jodium en 20 g KI (kaliumjodide) en breng ze over in een beker van 1 l.
  2. Los de reagentia op in 100 ml gedestilleerd water. Roeren.
  3. Breng het totale volume van de oplossing op 1000 ml.
  4. Meet met behulp van een maatcilinder 378 ml van de oplossing gemaakt in stap 1 & 3 en breng over in een glazen kan van gallon. Dek af met een deksel en etiket.

Zetmeel-jodiumoplossing

  1. Meet 50 ml van de zetmeeloplossing af en breng over in een erlenmeyer.
  2. Meet 50 ml van de jodiumoplossing af en breng over in de erlenmeyer, roer het samen met de zetmeeloplossing tot alles goed gemengd is. Bedek met kurk. Label

Experimenteel protocol

  1. Klem je buret aan een ringstandaard. Plaats een bekerglas van 250 ml onder de buret. Zorg ervoor dat de kraan op de buret gesloten is.
  2. Voeg met behulp van een trechter de zetmeel-jodiumoplossing toe aan de buret en zorg ervoor dat deze niet te vol raakt. Oefen met het openen en sluiten van de kraan, zodat u gemakkelijk de druppels kunt tellen die eruit komen als de kraan wordt geopend.
  3. Bereid je eerste sinaasappelmonster voor door de onrijpe sinaasappel te schillen en in een sapcentrifuge te doen of het sap van de onrijpe sinaasappel handmatig in een bekerglas te persen. Zorg voor minimaal 100 ml sap in een beker, gebruik eventueel extra onrijpe sinaasappels.
  4. Plaats het sinaasappelsapbekertje onder de buret en voeg heel geleidelijk de zetmeel-jodiumoplossing toe, terwijl je het aantal druppels telt. Bij elke druppel zal de oplossing reageren met de vitamine C en tijdelijk helder worden. Zodra al het ascorbinezuur is geneutraliseerd, zal de toevoeging van de zetmeel-jodiumoplossing niet helder worden, maar in plaats daarvan zijn donkere kleur behouden. Noteer het totale aantal druppels dat nodig is om dit punt te bereiken.
  5. Herhaal dit experiment met een halfrijpe sinaasappel en een rijpe sinaasappel. Overweeg het experiment te herhalen om rijp fruit dat op het aanrecht heeft gestaan ​​te vergelijken met rijp gekoeld fruit.

Voorwaarden/concepten: Vitamine C (ascorbinezuur, Buret gebruiken en oplossingen maken, Concentratie van vitamine C als functie van rijpheid en leeftijd van fruit Chemische stabiliteit

Hobbs, Christopher & Elson Haas. Vitaminen voor Dummies. Voor Dummies Press (1999)

Katherine M. Phillips et al. &ldquoStabiliteit van vitamine C in bevroren rauwe groenten en fruit

Homogenates & rdquo Journal of Food Composition and Analysis. 23 253&ndash259 (2010)

Linus Pauling Instituut: Vitamine C

Disclaimer en veiligheidsmaatregelen

Education.com biedt de Science Fair Project Ideas alleen voor informatieve doeleinden. Education.com geeft geen enkele garantie of verklaring met betrekking tot de Science Fair Project Ideas en is niet verantwoordelijk of aansprakelijk voor enig verlies of schade, direct of indirect, veroorzaakt door uw gebruik van dergelijke informatie. Door toegang te krijgen tot de Science Fair Project Ideas, doet u afstand van en doet u afstand van alle claims tegen Education.com die daaruit voortvloeien. Bovendien wordt uw toegang tot de website van Education.com en Science Fair Project Ideas gedekt door het privacybeleid en de gebruiksvoorwaarden van de site, die beperkingen op de aansprakelijkheid van Education.com bevatten.

Hierbij wordt gewaarschuwd dat niet alle projectideeën geschikt zijn voor alle personen of onder alle omstandigheden. De uitvoering van een Idee voor een Wetenschapsproject mag alleen worden uitgevoerd in een geschikte omgeving en met passend ouderlijk of ander toezicht. Het lezen en opvolgen van de veiligheidsmaatregelen van alle materialen die in een project worden gebruikt, is de exclusieve verantwoordelijkheid van elk individu. Raadpleeg voor meer informatie het handboek van Science Safety van uw staat.


In dit wetenschapsproject leer je een interessante methode om de hoeveelheid vitamine C in een oplossing te bepalen. De techniek die je gaat gebruiken heet titratie.

Titratie wordt gebruikt om de onbekende concentratie van een chemische stof in een oplossing te bepalen. Bij een titratie wordt geleidelijk een zorgvuldig afgemeten hoeveelheid van een tweede chemische stof aan de oplossing toegevoegd. De toegevoegde chemische stof reageert met de oorspronkelijke chemische stof, waarvan de concentratie onbekend is. De oorspronkelijke chemische stof heet de titrand, en de toegevoegde chemische stof waarvan de concentratie bekend is, wordt de . genoemd titrant, of titratie oplossing. De titratieoplossing reageert met de titrand en het verloop van deze reactie wordt nauwlettend gevolgd. Wanneer 100% van de oorspronkelijke verbinding met de toegevoegde chemische stof heeft gereageerd, is de titratie voltooid. Nu kan de concentratie van de oorspronkelijke chemische stof worden bepaald uit de hoeveelheid titratieoplossing die is toegevoegd.

Om beter te begrijpen hoe een titratie werkt, laten we eens kijken naar het specifieke voorbeeld van het bepalen van de concentratie van vitamine C. Vitamine C, ook wel bekend als ascorbinezuur, is in dit geval de titrand (omdat de concentratie onbekend is). Je begint met een gemeten volume van de titrand. De titratieoplossing die aan de titrand wordt toegevoegd, is: jodium. U begint met het gebruik van uw jodiumoplossing om een ​​bekende hoeveelheid vitamine C te titreren, met behulp van een oplossing bereid uit een vitamine C-tablet. U zult zorgvuldig de hoeveelheid jodiumoplossing afmeten die nodig is om de bekende hoeveelheid vitamine C te titreren. U weet wanneer de titratie is voltooid, omdat u een derde chemische stof en in de handel oplosbaar zetmeel aan de oplossing toevoegt. Het zetmeel fungeert als een indicator: het zetmeel verandert de kleur van de oplossing wanneer de jodium/vitamine C-reactie is voltooid. Zodra de oplossing van kleur verandert, stopt u met het toevoegen van jodiumoplossing. Nadat u uw jodiumoplossing hebt gekalibreerd met een bekende hoeveelheid vitamine C, kunt u de procedure herhalen om te bepalen hoeveel vitamine C er in monsters van vers geperst sinaasappelsap zit.

De chemische reactie van jodium met vitamine C heet an oxidatie-reductiereactie: (chemici gebruiken vaak de afkorting 'redoxreactie' om naar dit type reactie te verwijzen). Het ascorbinezuur wordt geoxideerd tot dehydroascorbinezuur en het jodium wordt gereduceerd tot jodide-ionen. Oxidatie-reductiereacties komen altijd in paren voor zoals deze. Het molecuul dat elektronen verliest is geoxideerd, en het molecuul dat de elektronen accepteert is verminderd.

In dit scheikundewetenschappelijk project ga je onderzoeken hoe verschillende bewaartijden de hoeveelheid vitamine C in vers geperst sinaasappelsap beïnvloeden. Hoe denk je dat de hoeveelheid vitamine C in de loop van de tijd zal veranderen, als deze al verandert? Maak je klaar om wat titraties te doen om het zelf te ontdekken.


Hebben sinaasappels sporen van zetmeel? - Biologie

Lakyn Allen, Landon Fox, Gina Thomas, Paola Ruiz, Christine Carroll

Eiwitten, eenvoudige suikers, lipiden en zetmeel: een experiment

Onderzoek naar het bestaan ​​hiervan in limonade en crackers

Abstract. In een experiment ontworpen door Kim Wootton werd onderzocht of de componenten (eiwitten, eenvoudige suikers, lipiden en koolhydraten) in deze voedingsmiddelen (limonade, crackers) aanwezig waren. Het proces voor het vinden van eiwitten omvat het mengen van het item met 30 druppels kopersulfaat (CuSO 4 ) en 3 druppels natriumhydroxide (NaOH). Een positief testresultaat zou verschijnen als een diepblauwe, bijna paarse kleur. Het proces om te bepalen of het voedingsmiddel enkelvoudige suiker bevat, omvat het in een reageerbuisje doen, het mengen met Benedict's Solution en het hele buisje opwarmen in een kokend waterbad. Een positieve test zou worden aangegeven door een blauwe naar oranje kleurverandering. Om te zien of er lipiden aanwezig waren, deden we 2 druppels van onze gemaakte oplossing (limonade of water/cracker-mix) op een druppel bruin papier. Doorschijnendheid gaf een positief testresultaat aan. Ten slotte, om te testen op zetmeel, doen we ons artikel in een reageerbuis en vermengd met een druppel jodium. Een positief resultaat werd aangegeven door een blauwe tint in de buis. (Wootton 2014). Onze verzamelde gegevens onthulden een aanwezigheid van eenvoudige suiker in beide items, een aanwezigheid van eiwit in alleen de limonade, een verschijning van lipiden in geen van beide, en een verschijning van zetmeel in alleen de cracker. Dit rapport zal dit proces en de gegevensresultaten laten zien door middel van afbeeldingen en woorden.

In dit lab onderzoeken we de biochemie van de componenten die nodig zijn voor het leven. Alle levende wezens zijn gemaakt van 4 organische verbindingen: koolhydraten, lipiden, eiwitten en nucleïnezuren. We gebruiken deze organische verbindingen dagelijks in ons lichaam. Lipiden worden gebruikt voor energieopslag in organismen en bieden ook bescherming en isolatie. Overvloedige eiwitten zijn enzymen, die chemische reacties reguleren. Organismen gebruiken deze verbindingen in het proces dat metabolisme wordt genoemd. Dit proces bestaat uit het aanmaken van spierweefsel (anabolisme) en het afbreken van stoffen zoals het verteren van voedsel voor energie (katabolisme).

Om erachter te komen op welke verschillende manieren wij als organismen deze essentiële organische verbindingen verkrijgen, kunnen we veelvoorkomende voedingsmiddelen testen die we consumeren. Voor dit lab hebben we besloten om limonade en crackers te testen op lipiden, zetmeel, enkelvoudige suikers en eiwitten. Dit gaf ons een beter begrip van wat gewone voedingsmiddelen kunnen bevatten en hoe ze interageren met onze innerlijke biochemie wanneer we ze consumeren.

Dit onderzoek is uitgevoerd bij New Tech High @ Coppell, op 11 september 2014. We hebben vier tests uitgevoerd met twee verschillende eetbare items om te zien welke organische verbindingen aanwezig waren. De vier tests die we hebben uitgevoerd, omvatten eenvoudige suiker, zetmeel, eiwit en lipide. Onze gecontroleerde groep was een reageerbuis met water. Voor elke test zijn we begonnen met twee reageerbuisjes, één gevuld met een verdunde crackervloeistof en één gevuld met country time limonade. Vervolgens voegden we verschillende hoeveelheden verschillende oplossingen toe en noteerden we welk soort reactie elk mengsel had. We konden zien dat er een positieve reactie plaatsvond als de oorspronkelijke kleur veranderde. Als er een negatieve reactie zou plaatsvinden, zou er geen kleurverandering zijn.

Over het algemeen waren de resultaten van het experiment dat we hebben uitgevoerd zoals verwacht. De enige onverwachte uitkomst bij het testen van de limonademix was de Protein Test, die een zeer lichte positieve reactie had. Op het voedingsetiket staat dat er 0 gram eiwit in de mix zat, dus de positieve reactie kan te wijten zijn aan een residu in de reageerbuis die we van eerdere experimenten gebruikten. Zowel de lipiden- als de zetmeeltest hadden geen reactie in de lipidentest, er was geen doorschijnende plek omdat de limonade verdampte, en in de zetmeeltest was er geen reactie omdat de kleur niet veranderde nadat jodium was toegevoegd. In de eenvoudige suikertest, toen we 5 druppels Benedict's toegevoegd en de reageerbuis in een kokend waterbad verwarmden, werd de kleur van het mengsel oranje, wat wijst op een positieve reactie. Bij het testen van de crackers hadden zowel de eiwit- als de lipidentest een negatieve reactie, omdat er in de lipidentest geen doorschijnende plek was (het mengsel van gemalen crackers en water was verdampt), en in de eiwittest veranderde de kleur niet . De enkelvoudige suiker- en zetmeeltesten leverden positieve reacties op, aangezien de kleur in beide mengsels veranderde zodra hun experimenten waren voltooid.

Door onze experimenten ontdekten we dat Countrytime Lemonade enkelvoudige suikers bevat, maar geen lipiden en zetmeel. We kregen een zwak positief resultaat in de eiwittest. Dit was onverwacht, maar we zijn van mening dat dit een vals-positief was vanwege de slechte instrumentreiniging door de groep eerder. De vermelding van enkelvoudige suikers was te verwachten aangezien limonade over het algemeen limonade bevat. Toen we de cracker testten, ontdekten we dat deze wel eenvoudige suikers en zetmeel bevat, maar geen lipiden of eiwitten, zoals verwacht.

Het doel van dit laboratorium was om de voedingswaarde te bepalen van een paar veelvoorkomende huishoudelijke artikelen die de meesten van ons gebruiken en waaraan we worden blootgesteld. We weten nu dat Countrytime Lemonade-mix geen lipiden, zetmeel of eiwitten bevat (hoewel er een discrepantie was in onze gegevens met betrekking tot eiwitten), terwijl het wel eenvoudige suikers bevat. We ontdekten ook dat crackers geen eiwitten of lipiden bevatten, maar wel uit enkelvoudige suikers en zetmeel. Het onderscheiden van dit soort informatie over het voedsel dat we tot ons nemen, is cruciaal voor de bevordering van een gezonde levensstijl en een betere kwaliteit van leven in het algemeen.

Reece, JB (2015). Campbell Biology: Concepts & amp Connections (Vol. 8). Upper Saddle River, New Jersey: Pearson Education.

Sample Lab Report-Ecology 101. (2004, 22 september). Ontvangen 11 september 2014.


Amylase op zetmeellab

In dit experiment zul je de werking van het enzym observeren amylase op zetmeel. Amylase verandert zetmeel in een eenvoudigere vorm: de suiker maltose, die oplosbaar is in water. Amylase is aanwezig in ons speeksel en begint in te werken op het zetmeel in ons voedsel terwijl het nog in de mond is.
Blootstelling aan hitte of extreme pH (zuur of base) zal denatureren eiwitten. Enzymen, waaronder amylase, zijn eiwitten. Als het gedenatureerd is, kan een enzym niet langer als katalysator voor de reactie werken.
Benedict's oplossing is een testreagens dat positief reageert met eenvoudige reducerende suikers zoals maltose, maar niet reageert met zetmeel. Een positieve test wordt waargenomen als de vorming van een bruinrood cupro-oxide-neerslag. Een zwakkere positieve test zal geel tot oranje zijn.

Toevoegen 1g van maizena naar een beker met 100ml van koud gedestilleerd water. Verwarm het mengsel onder regelmatig roeren tot het begint te koken. Laat afkoelen.

1. Vul het bekerglas van 250 ml voor ongeveer 3/4 met water en plaats het op de hete plaat voor een kokend waterbad. Houd het water GEWOON AAN HET KOKEN.

2. Markeer 3 reageerbuizen EEN, B en C. “Spit'8221 tussen 1 en 2 ml van speeksel in elke reageerbuis.

3. In buis EEN, toevoegen 2 ml van azijn. In buizen B en C, toevoegen 2 ml van gedestilleerd water. Klop de buizen om te mengen.

4. Plaats buis B in het kokendwaterbad voor 5 minuten. Haal ze na vijf minuten uit het bad en plaats ze terug in het reageerbuisrek.

5. Toevoegen 5 ml van de zetmeeloplossing aan elke buis en klop om te mengen. Laat de buizen zitten voor 10 minuten, af en toe op de buizen bonzen om te mengen.

6. Toevoegen 5 ml van Benedict's 8217s-oplossing aan elke buis en klop om te mengen. Plaats de buizen in het warmwaterbad. De reactie duurt enkele minuten om te beginnen.

Buis EEN: Zetmeel + speeksel behandeld met azijn (zuur)

Wat betekent dit? __________________________________________________

Buis B: Zetmeel + speeksel en water, behandeld in een kokend waterbad

Wat geeft dit aan? __________________________________________________

Buis C: Zetmeel + speeksel

Wat geeft dit aan? __________________________________________________

1. Wat is de functie van een enzym?

2. Waar hecht een substraat aan een enzym?

3. Als er een enzym aanwezig is in een reactie, is er minder ________________ _________________ nodig om de reactie op gang te brengen.

4. Wat is een veelvoorkomend achtervoegsel aan het einde van de meeste biologische enzymen?

5. De meeste enzymen zijn macromoleculen die ________________ worden genoemd.

6. Definieer denaturatie van eiwitten.

7. Noem 3 dingen die een enzym kunnen denatureren of ontvouwen.

8. Welk zwak zuur denatureerde in dit laboratorium het eiwit?

9. Wat was het doel van het plaatsen van één reageerbuis in een heetwaterbad?


Phadebas in forensische biologie

Binnen de Forensische Biologie wordt Phadebas al jaren gebruikt. Het oorspronkelijke artikel dat het nut van Phadebas® in forensisch onderzoek beschreef, werd al in 1974* geschreven. Het begon allemaal in het VK, maar het gebruik is nu wereldwijd. Oorspronkelijk werd de test gebruikt voor het vermoedelijk testen van verdachte vlekken, d.w.z. Tube-test, maar sommige laboratoria begonnen Phadebas Amylase-testtabletten te pletten en op filterpapier te spuiten. Deze papieren werden gebruikt als zoekinstrumenten om verborgen speekselvlekken op items te lokaliseren, als aanvulling op de Tube-test die alleen zichtbare vlekken kon testen.

Deze methode verspreidde zich, maar zo'n technische procedure veroorzaakte grote verschillen tussen laboratoria. Om dit probleem op te lossen, startte Magle in samenwerking met enkele Forensic Biology-laboratoria een project om industrieel geprefabriceerde gecoate Phadebas-papieren te ontwikkelen. In 2007 werd de Phadebas Forensic Press Test gelanceerd om ervoor te zorgen dat alle kranten

  • Zijn direct toepasbaar vanuit pakket
  • Batchnummer en vervaldatum opnemen
  • Zijn gemakkelijk te hanteren en te gebruiken
  • Verwaarloosbare batchvariaties hebben
  • Geef geen verschil tussen laboratoria en heb daardoor een hogere geloofwaardigheid als bewijsmateriaal
  • Worden geproduceerd in schone faciliteiten om het risico op besmetting te voorkomen.

Het principe achter de test is dat Phadebas®, bestaande uit zetmeelmicrosferen met een blauwe kleurstof verknoopt met het zetmeel, geïmmobiliseerd wordt op filtreerpapiervellen. In aanwezigheid van amylase wordt het zetmeel verteerd, waardoor de in water oplosbare kleurstof vrijkomt, die door de poriën van het filterpapier diffundeert. De resulterende blauwe kleur wordt visueel waargenomen aan de niet-reagenszijde van het Phadebas®-papier. De Press-test wordt uitgevoerd wanneer het nodig is om een ​​amylase-positief gebied op een artikel te lokaliseren. Als er een zeer sterke reactie wordt verkregen met de Press-test en er is geen ander duidelijk verontreinigend materiaal, dan wordt dit geïnterpreteerd als een indicatie van speeksel. De volgende link illustreert de methodologie en eenvoud met een overzicht van Phadebas Forensic Press Test. Volg voor gedetailleerde instructies de Phadebas Forensic Press Test Instructions.

In-house testen bij verschillende onafhankelijke forensische laboratoria hebben uitgewezen dat geen enkele andere forensisch relevante lichaamsvloeistof (zweet, sperma en vaginale afscheiding) binnen 10 minuten zal reageren met het huidige protocol, zelfs niet na herhaalde depositie. De uitzondering zijn fecale vlekken die niveaus van amylase kunnen bevatten die even hoog zijn als die in speeksel. Om deze reden mogen positieve waarnemingen binnen duidelijk met feces verontreinigde gebieden niet worden geïnterpreteerd voor de aanwezigheid van speeksel. De aanwezigheid van mogelijk fecaal materiaal op een voorwerp moet worden vastgelegd in de onderzoeksnota's. In een onafhankelijk onderzoek uitgevoerd in het VK werd aangetoond dat speeksel van de meest voorkomende huisdieren geen aanleiding gaf tot valse positieven.

Om selectiviteit voor speeksel te garanderen, mogen de papieren geen vlekken detecteren met een amylase-activiteit van minder dan 2000 eenheden/L binnen een testtijd van 40 minuten. In verschillende wetenschappelijke artikelen is aangetoond dat 1:100 verdund speeksel gemakkelijk kan worden opgespoord. Ga voor meer informatie naar het Phadebas-archief.

De Phadebas Forensic Tube Test is gevoeliger dan de perstest en wordt semi-kwantitatief gebruikt voor het vermoedelijk testen van speekselafzettingen. Als het vermoeden bestaat dat de te testen vlek een zwakke speekselvlek is, of als het supernatant van een geëxtraheerde vlek of wattenstaafje wordt getest, biedt de Phadebas-buistest een betere methode dan het gebruik van Phadebas-papier. Een buistest kan ook worden uitgevoerd als amylase wordt gedetecteerd (met behulp van de Phadebas® Forensic Press-test) in een gebied dat andere vlekken vertoont, zoals sperma, bloed of zware vaginale afzettingen. De Tube-test wordt op twee manieren gebruikt, kwalitatief en kwantitatief. De kwalitatieve test berust op het waarneembare kleurverschil tussen de positieve test en een blanco, terwijl de kwantitatieve test gebruik maakt van absorptiespectrofotometrie om de α-amylase-activiteit exact te meten.

* Een verbeterde test voor de detectie van speekselamylase in vlekken, Willott, G.M., Journal of the Forensic Science Society 1974 14: 341-344


Salty Science: zit er jodium in je zout?

Invoering
Is het je ooit opgevallen dat het zout dat je gebruikt zegt dat het "gejodeerd" is? Jodium is een micronutriënt, wat betekent dat we het in kleine hoeveelheden nodig hebben om gezond te zijn. Omdat jodium relatief zeldzaam is in de normale voeding van veel mensen, wordt het toegevoegd aan keukenzout. Als mensen hun eten zouten, zoals smakelijke kalkoen, vulling en aardappelpuree, krijgen ze ook jodium binnen. In deze wetenschappelijke activiteit ga je wat keukenvriendelijke chemie gebruiken om te onderzoeken welke soorten zout jodium bevatten en welke niet. Als je dan aan tafel gaat voor je Thanksgiving-diner, weet je of je ook moet bedanken dat je jodiumtekort helpt bestrijden.

Achtergrond
Micronutriënten, zoals jodium, zijn soorten voedingsstoffen die mensen in kleine hoeveelheden nodig hebben. Jodium is belangrijk om de schildklier van een persoon normaal te laten functioneren. (De schildklier is een klier in de nek die belangrijke hormonen maakt.) Het wordt in kleine hoeveelheden aangetroffen in andere voedingsmiddelen, waaronder zoutwatervissen, zeewier, schaaldieren, yoghurt, melk, eieren, kaas en een handvol andere edibles. Als een persoon niet genoeg jodium binnenkrijgt, kan hij een jodiumtekort krijgen. Het ontbreken van deze micronutriënt kan verschillende medische problemen veroorzaken (meestal als gevolg van hypothyreoïdie veroorzaakt door een schildklier die niet genoeg hormonen maakt). Deze aandoeningen omvatten struma (een zichtbare zwelling van de schildklier) en ernstige geboorteafwijkingen. Jodiumtekort is zelfs de meest voorkomende vermijdbare oorzaak van mentale retardatie.

Jodium (in de vorm van jodide) wordt toegevoegd aan keukenzout om jodiumtekort te helpen voorkomen. Sinds de jaren tachtig zijn er pogingen gedaan om universele zoutjodisatie te hebben. Dit is een betaalbare en effectieve manier geweest om jodiumtekort over de hele wereld te bestrijden, maar niet al het zout bevat jodium. Je gaat onderzoeken of verschillende zouten jodium bevatten door ze te mengen met waszetmeel, dat met jodium een ​​blauwpaarse en lichtgekleurde chemische stof vormt. (Azijn en waterstofperoxide worden aan de zoutoplossing toegevoegd om deze chemische reactie te laten plaatsvinden.)

Materialen
&bull Plastic wegwerpbekers van 10 gram of groter. (U kunt ook kleinere kopjes gebruiken en de activiteit verkleinen.)
&stier Gedestilleerd water
&stier Maatbekers
&stier Maatlepels
&bull Waszetmeeloplossing, ook wel vloeibaar zetmeel genoemd (U kunt ook een geschikte zetmeeloplossing maken door een kopje biologisch afbreekbare verpakkingspinda's op zetmeelbasis op te lossen in twee kopjes water.)
&bull Antiseptische oplossing voor jodium (optioneel) (Gebruik een jodiumtinctuur of een povidon-jodiumoplossing, te vinden in de EHBO-afdeling van supermarkten en drogisterijen. Als het jodium niet met een druppelaar wordt geleverd, hebt u ook een druppelaar voor medicijnen nodig .)
&bull Plastic wegwerplepels
Ten minste drie verschillende soorten zout om te testen, bijvoorbeeld gewoon (niet-gejodeerd) tafelzout, gejodeerd tafelzout, pekelzout, steenzout, koosjer zout, "quotlite"-zout en zeezout (als u de jodium-antiseptische oplossing niet gebruikt, gejodeerd keukenzout.)
&stier 3 procent waterstofperoxide
&stier Witte azijn

Voorbereiding
&bull Als u een jodium-antiseptische oplossing gebruikt, kunt u een positieve controlebeker bereiden, zodat u weet hoe de reactie tussen jodium en zetmeel eruit moet zien. Om dit te doen, giet je een half kopje gedestilleerd water in een wegwerpbeker, voeg je een halve theelepel (tl.) waszetmeeloplossing toe en voeg je vervolgens vijf druppels van de jodium-antiseptische oplossing toe. Wees voorzichtig bij het hanteren van het jodium, omdat het vlekken kan maken.
&bull Goed roeren met een plastic wegwerplepel. Wat gebeurt er met de vloeistof als het jodium wordt toegevoegd?

Procedure
&bull Kies een van de soorten zout die u wilt testen en meet vier eetlepels (el.) af in een schone, plastic wegwerpbeker. Voeg een kopje gedestilleerd water toe aan het zout en roer ongeveer een minuut goed door met een schone, plastic wegwerplepel. Je hebt niet al het zout nodig om op te lossen.
&bull Voeg dan een eetlepel toe. witte azijn, een el. van waterstofperoxide en een halve theelepel. van zetmeeloplossing. Wat denk je dat het doel van het zetmeel is?
&bull Roer de zoutoplossing goed door met de plastic wegwerplepel en laat de oplossing een paar minuten staan. Wat gebeurt er met de oplossing nadat je deze hebt geroerd? Wordt het een blauwpaarse kleur?
&bull Herhaal dit proces met de andere, verschillende soorten zout die u wilt testen. Zorg ervoor dat u voor elk type een andere, schone wegwerpbeker en -lepel gebruikt. Krijgt een van de andere zoutoplossingen een blauwpaarse kleur?
&stier Op basis van uw resultaten, welke zouten bevatten volgens u jodium (in de vorm van jodide) en welke niet? Komen uw resultaten overeen met de etikettering op de zoutverpakkingen, die vaak zeggen of het zout jodide bevat of niet?
&stier Extra: Probeer deze activiteit met nog meer verschillende soorten zouten. Zie de lijst met materialen hierboven voor enkele ideeën. Welke soorten zout bevatten jodium en welke niet? Komen uw resultaten overeen met hun etikettering?
&stier Extra: Bij deze activiteit heb je azijn toegevoegd omdat het een zuur is en de chemische reactie helpt plaatsvinden. Probeer de gejodeerde zoutoplossing opnieuw, maar laat deze keer de azijn weg. Vindt de reactie nog steeds plaats, waardoor de oplossing een blauwpaarse kleur krijgt? Als de reactie optrad, duurde het dan langer voordat de reactie plaatsvond?
&stier Extra: Temperatuur beïnvloedt vaak chemische reacties. Je zou deze activiteit opnieuw kunnen proberen, maar test een gejodeerde zoutoplossing bij verschillende temperaturen (door het gedestilleerde water te verwarmen of af te koelen). Hoe verandert het veranderen van de temperatuur van de oplossing hoe de kleurveranderende reactie plaatsvindt?

Observaties en resultaten
Veranderde de gejodeerde keukenzoutoplossing in een blauwpaarse kleur toen je het zetmeel mengde? Veranderde het "lite" tafelzout op dezelfde manier van kleur, terwijl de meeste andere zoutsoorten dat niet deden?

Bij deze activiteit had je moeten zien dat het gejodeerde tafelzout en de "lieten" tafelzoutoplossingen beide veranderden in een blauwpaarse kleur (net als de jodium-antiseptische oplossing, als je die gebruikte). Dit geeft aan dat jodide aanwezig is in dit soort zouten. U hebt waarschijnlijk geen kleurverandering gezien voor de oplossingen die zijn gemaakt met niet-gejodeerd zout, steenzout, koosjer zout of zeezout, omdat deze variëteiten doorgaans geen jodide bevatten.

De zetmeeloplossing werd bij deze activiteit gebruikt omdat het een blauwpaarse en kleurige chemische stof vormt in combinatie met jodium. Omdat de oorspronkelijke pH van de oplossing moet worden gewijzigd om deze chemische reactie effectief te laten plaatsvinden, wordt er ook azijn (een zuur) aan toegevoegd. Waterstofperoxide wordt gebruikt om het jodide van het zout om te zetten in jodium, waarmee het zetmeel reageert.

Schoonmaken
Zorg ervoor dat u alle maatlepels of ander keukengerei grondig wast dat in contact is gekomen met de oplossingen die in deze wetenschappelijke activiteit zijn gemaakt. U kunt de oplossingen weggooien door ze in de afvoer te gieten.

Meer te ontdekken
Informatiecentrum voor micronutriënten: jodium, van het Linus Pauling Institute, Oregon State University
Tekorten aan micronutriënten: jodiumtekortstoornissen, van de Wereldgezondheidsorganisatie
Testen op jodide in tafelzout (pdf), van Stephen W. Wright, Tijdschrift voor chemisch onderwijs
Het jodiumgehalte van zout bepalen, van Science Buddies

Deze activiteit wordt u aangeboden in samenwerking met Science Buddies


Top 8 experimenten met translocatie in planten

De volgende punten belichten de acht experimenten met translocatie van planten. Some of the experiments are: 1. Demonstration of Upward Translocation from Germinating Seeds 2. To Show the Downward Translocation of Food in a Woody Stem (Or Effect of Ringing Upon Food Movement) 3. Demonstration of Translocation from Leaves 4. Demonstration of Upward Translocation of Food in Woody Stem and Others.

Experiments # 1

Demonstration of Upward Translocation from Germinating Seeds:

About 100 seeds of pea or gram or Vicia seeds are soaked in distilled water. The seeds are divided into two lots. One lot of seeds is taken out at the stage when seed coats can be removed. The fresh weight, dry weight and ash weight of this lot are determined.

The other lot is allowed to grow in dark.

As soon as the primary leaves appear in this lot, the cotyledons are separated from a few seedlings:

(i) The average dry weight of the cotyledons and the shoot,

(ii) The average ash weight and

(iii) The average loss or gain of the cotyledons and the shoots are sep­arately determined.

(i) Percentage loss of dry weight and ash weight of the cotyledons and

(ii) The corresponding percentage increase of dry and ash weights of the shoot are calculated from the data.

The cotyledons are the storehouse of growing embryo. As the embryo grows to a seedling, reserved food material is translocated to the seedling from cotyledons. So long the leaves are not formed, photo­synthesis cannot take place and seedlings remain entirely dependent on the cotyledons for their nourishment and growth.

In this experiment the seedlings are grown in dark in order to preclude the possibility of getting nourishment of the seedlings from the photosynthate.

Decrease of the food materials from the cotyledons and concomitant increase in the shoot indi­cates that food materials are translocated upward to the shoot at the cost of cotyledons. Some amount of food materials is lost by way of respiration or other catabolic processes in both cotyledons and shoots which may be taken here as insignificant.

Experiments # 2

To Show the Downward Translocation of Food in a Woody Stem (Or Effect of Ringing Upon Food Movement):

The experiment is to be performed with a woody plant in which the apical growth has ceased. It is best performed in growing season. One or more stems or branches are selected which have no side branch for 50 cm or more and which are several centimeters in diameter.

Ring is made by removing the bark and phloem tissue approximately in the middle of the clear portion. The removed rings of bark should be about 1 cm wide and ringing should be done carefully so that the xylem is not damaged.

The exposed surface of the xylem should be carefully scrapped with a sharp knife so that all traces of cambium are removed. The ex­posed surface is covered with paraffin wax. After three weeks, final growth measurements are taken.

Sections are cut 25 to 50 cm from the regions immediately above and below the ring and following data are taken:

(i) Sections from just above and just below the ring are tested for starch with iodine solution and compared.

(ii) The volumes of 100gm of tissue from below and above the ring is determined by displacement of water and compared.

(iii) The percentage of dry matter in each tissue is determined and compared.

Results are tabulated or plotted to show the effect of ringing upon translocation of food material based on the above three indices.

Food materials are synthesized in leaves and translocated downwards through the phloem. Removal of phloem tissue hampers this downward translocation and accumulation of food materials above the ring occurs. This experiment indicates that organic solutes flow downward through the phloem into root and other organs, when the above the indices below and above the ring are compared.

Experiments # 3

Demonstration of Translocation from Leaves:

Several seedlings of kidney bean (Phaseolus vulgaris) are chosen on which the first pair of primary leaves is well developed. Three sets of plants are exposed to bright sunlight until the leaves show heavy starch accumulation on test with 1% iodine.

One petiole of each pair of leaves is then treated by the following methods, leaving the second petiole and leaf intact as control:

(i) One petiole is cut off and kept in water for comparison with control leaf

(ii) Killing a portion of one petiole by a hot forceps (heating any other portion of the plant is avoided the leaf may be kept in position with the help of a thread) and

(iii) A portion of one petiole is anesthetised with chloroform or ether soaked in cotton. All the plants are kept in dark in a moist chamber at 20°C for 24 hour’s. Chloro­phyll is removed from the leaves with alcohol and a few drops of lactic acid and tested for starch with 1 % iodine solution.

The untreated leaves show little or no response with iodine test compared to treated ones.

Marked loss of starch from a leaf is taken as an evidence of downward translocation. Considerable retention of starch in a treated leaf indicates that starch has not been translocated due to interference in the translocatory path. The experiment thus shows that food material is translocated from leaves.

Experiments # 4

Demonstration of Upward Translocation of Food in Woody Stem:

The experiment can be best performed in growing season. Four approximately uniform twigs on a woody plant are selected. Potted woody plants or even cut branches with their basal ends immersed in water can be used in this experiment. When tested with iodine they show considerable quantity of starch.

Smooth-barked species with rather stout stems and with true terminal buds are most suitable If possible twigs should be selected from plants which bear no side branches for a distance of about 40 cm back from the terminal bud.

The selected branches are numbered. Twig number 1 is ringed about 5 cm, twig number 2 about 20 cm, and twig number 3 about 40 cm below the respective terminal buds. Twig number 4 is kept as control.

During ringing, a strip of bark is re­moved 0.5 cm wide and the exposed wood is carefully scrapped to remove all traces of cambium avoiding any damage to the xylem.

The exposed wood is coated with paraffin wax. Leaves and lateral buds are removed from the portions of the twigs above the rings as fast as they emerge from the stem.

On the control stem all the leaves and lateral buds which start to develop about 40 cm below the original location of the terminal bud are removed. The twigs are observed from time to time as growth proceeds from the terminal bud, noting especially differences in the rate of longi­tudinal growth.

After three weeks the stem elongation which has occurred from the terminal bud of each stem is measured and recorded in millimeters. Cross sections are cut from above and below the ring of each stem and tested for starch with iodine solution.

The rate of growth above the ring in case of number 1, 2 and 3 twigs is very much checked as compared with control. The growth that has occurred in the ringed stems is only due to upward translocation of food materials through xylem.

In case of control twig the upward trans­location has taken place both through xylem and phloem. It is also evident from the experiment that the more is the distance of the ring from the terminal bud, the less is the rate of growth above the ring. The accu­mulation of starch is always maximum just below the ring.

NB From the above experiment a correlation with translocation and growth may be made. The influence of phloem upon translocation and growth may also be studied by removing different amounts of phloem tissue from a particular region on the stem.

Experiments # 5

To Demonstrate the Exudation from Phloem Tissue:

Cucurbita seedlings are grown under favourable condi­tions until they have attained a length of 30 cm. The stem of one of the plants is cut off with a sharp scalpel from 5 to 10 cm above the soil surface. The cut end of the excised portion of the stem is held in an inverted position and observed under a powerful hand lens or binocular microscope for exuda­tion.

Exudation may also be studied by puncturing a sharp needle through the bark to a sufficient depth to just reach the inner layer of phloem.

It is observed from what tissue (xylem or phloem?) the exudate comes. If exudate cannot be discerned clearly in the excised by stem the first drop of exudate is blotted with a filter paper and the cut end is re-examined.

It is clear from the study that the sap comes out mainly through the phloem tissue in the form of droplets.

Experiments # 6

Demonstration of Translocation of Food into Developing Fruits:

Suitable species of fruit trees on which fruits of consider­able size usually develop are selected. The experiment should be started when the fruits on the tree are half-matured.

At least ten fruits are tagged and numbered and their circumferences are carefully measured. The fruits are isolated from the main phloem system of the plant by means of proper ringing. Rings may be made at the base of fruiting branch or both above or below its point of attachment on the stem.

All precautions are followed in ringing the stem. The circumferences of an equal number of fruits from un-ringed branches are also measured to serve as controls. From time to time both sets of fruits are measured and rates of growth in diameter of the fruits from the ringed and un-ringed branches are com­pared.

The rates of growth in diameter of fruits in ringed and control sets are recorded and compared.

The developing fruits are the active centres of mobilisation of carbohydrate from other regions of the plant. Since phloem is the principal path of translocation of food materials to the developing fruits, removal of phloem tissue greatly hampers this transport of carbohydrate to the growing fruits. Hence the growth rate of the ringed fruits is much less compared to controls.

Experiments # 7

Demonstration of Upward Translocation of Mineral Salts In-Woody Stem:

This experiment can be performed with potted woody plant as in Expt. 4. Three sets of at least five comparable branches on the plant are selected. In one Set all of the branches are ringed 5 cm below the base of each terminal bud. Rings are made about 0.5 cm wide, the ex­posed wood is carefully scrapped to remove all traces of cambium and the exposed surface is covered with paraffin wax.

In the second set all the branches are removed from the plant by making a sharp cut at the point corresponding to that at which the branches of the first set were ringed, i.e., 5 cm below each terminal bud. This set is used as ‘starting’ control.

In the third set all the branches are tagged at a point 5 cm below the terminal bud. At the end of three weeks the branches of the girdled set and the tagged set which is to serve as ‘end’ control are removed by cutting them off at the point of girdle and at the point of tagging respectively.

The ash content of the branches of the ‘starting’ control is determined at the beginning of the experiment and that of the ‘end’ control and of ringed branches at the end of the experiment, as follows.

The sample of stems to constant weight is dried in an oven at about 80°C and its dry weight is determined. Each sample is ground and mixed thoroughly. The ground dry tissue from each set of stem is weighed and heated to constant weight in a muffle furnace at about 600°C.

The estimated ash contents are expressed as percentages of the dry weight and fresh weight of stems.

The mineral from the soil solution is carried through the xylem in transpiration stream, though some amount of mineral is trans­located through phloem. As minerals are mainly translocated through the xylem, the removal of phloem tissue from the ring will not debar the stem above the ring from the supply of mineral nutrients.

When the ash content of the stems of three sets is compared, it becomes clear that percentage of ash content is maximum in case of the set where the branches were origin­ally removed 5 cm below the terminal bud and minimum in case of the set where branches remained intact. This shows that translocation of mineral solutes takes place mainly through xylem.

Experiments # 8

Demonstration of the Effects of Inhibitors on the Uptake, Distri­bution and Translocation of 32 P in Plants:

One-month-old bean seedlings grown in sand culture may be suitably employed in this study. The plants are removed from the culture taking sufficient care not to injure the roots.

Roots are then washed well to remove the adhering particles. These are then selected for treatment. Two such plants are taken and the roots are inserted in each of the six test tubes containing the following solutions (10 ml) and three test tubes may be bubbled for aeration.

Now from each leaf, discs are prepared with the help of a corkborer at different intervals, dried under infra-red lamp and its radio-activity is measured in a Geiger-Muller Counter. After 1 to 2 hr. the plants are taken out, roots are washed well with carrier phosphate (0.01 M Na2HPO4) and the distribution of radio-activity is determined by autoradiography as follows.

The plant is kept for sufficient time in contact with a suitable film in a dark room under some uniform pressure. [Half-life of 32P is to be taken into consideration (14.3 days)]. After exposure the film is developed and the spots of radio-activity are determined.

Exposure time = 10 7 / x min.

+3 days, where x is the count per minute (CPM) during experiment.

The uptake of 32 P by plants as affected by aeration, sodium arsenate and sodium azide is noted and data are tabulated.

The above experiment clearly demonstrates the transloc­ation of radio-active phosphorus to different organs of the plant. The translocation of phosphorus is a function of time and distance from the roots as indicated by the radio-activity in different plant parts.

Again metabolic inhibitors like azide or arsenate inhibit the rate of translocation indicating that it is regulated by the metabolism of living cells. Increased translocation with aeration suggests that respiratory energy is also involved in the translocation of phosphorus.


Bibliografie

  • Andrew Weil, B. B. (2012, 10 29). WEIL. Retrieved from VITAMINS: https://www.drweil.com/vitamins-supplements-herbs/vitamins/vitamin-c-benefits/
  • Anne, M. (2013, 12 18). What Citrus Fruit Has the Most Vitamin C? Retrieved from Livestrong.com: http://www.livestrong.com/article/410729-what-citrus-fruit-has-the-most-vitamin-c/
  • AP Chemistry. (n.d.). Retrieved from http://drvanderveen.com/AP%20Chapter%2014%20Outline%202014.pdf
  • Boundless.com. (2016, 8 26). Retrieved from https://www.boundless.com/chemistry/textbooks/boundless-chemistry-textbook/chemical-kinetics-13/activation-energy-and-temperature-dependence-100/the-collision-theory-422-7067/
  • Difference Between Acid base titration and Redox titration. (2015, 12 3). Retrieved from PEDIAA: http://pediaa.com/difference-between-acid-base-titration-and-redox-titration/
  • Difference Between Acid-Base Titration and Redox Titration. (2015, 11 25). Retrieved from Difference Between.com: http://www.differencebetween.com/difference-between-acid-base-titration-and-vs-redox-titration/
  • Helmenstine, A. (2017, 4 6). Vitamin C Determination by Iodine Titration. Retrieved from ThoughtCo.: https://www.thoughtco.com/vitamin-c-determination-by-iodine-titration-606322
  • Material Safety Data Sheet HCl MSDS. (2013, 5 21). Retrieved from Sciencelab.com: http://www.sciencelab.com/msds.php?msdsId=9924285
  • Material Safety Data Sheet Potassium Iodate MSDS. (2013, 5 21). Retrieved from ScienceLab.com: http://www.sciencelab.com/msds.php?msdsId=9927571
  • Material Safety Data Sheet Potassoium Iodide MSDS. (2013, 5 21). Retrieved from ScienceLab.com: http://www.sciencelab.com/msds.php?msdsId=9927231
  • Material Safety Data Sheet Starch Solution MSDS. (2013, 5 21). Retrieved from Sciencelab.com: http://www.sciencelab.com/msds.php?msdsId=9926918
  • Munyaka AW1, Makule EE, Oey I, Van Loey A, Hendrickx M. (2010, 5). Thermal stability of L-ascorbic acid and ascorbic acid oxidase in broccoli . Retrieved from NCBI: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/20546391
  • OPEN CHEMISTRY DATABASE. (2011, 12 26). Retrieved from PubChem: https://pubchem.ncbi.nlm.nih.gov/compound/ascorbic_acid#section=Top
  • Oragnic Chemistry. (2015). Retrieved from http://www.chemistrylecturenotes.com/html/collision_theory__temperature_.html
  • Rate of Reaction. (n.d.). Retrieved from Chem4Kids.com: http://www.chem4kids.com/files/react_rates.html
  • Rate of reaction 2 – Reaction rate and changing conditions. (n.d.). Retrieved from BBC: http://www.bbc.co.uk/schools/gcsebitesize/science/add_ocr_gateway/chemical_economics/reaction2rev1.shtml
  • Vecchio, A. G. (2014, 12 16). The pro-healty potential of Kale. Retrieved from flipper e nuvola: http://flipper.diff.org/apprulesitems/items/7224
  • Vitamin C (ascorbic acid) oxidation & orange juice. (2016, 10 16). Retrieved from Food Chemistry : https://foodcrumbles.com/vitamin-c-orange-juice/
  • Wkikpedia. (2017, 5 5). Retrieved from https://en.wikipedia.org/wiki/Redox_titration


Bekijk de video: Spanje is een sinaasappel! (Januari- 2022).